熊果酸經(jīng)SFRP4/Wnt/β-catenin/Foxo3a/p27通路調(diào)控血管平滑肌細(xì)胞增殖
發(fā)布時(shí)間:2021-07-07 10:30
目的:從SFRP4/Wnt/β-catenin/Fox O3a/p27通路的角度,研究熊果酸(UA)對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)A7r5細(xì)胞增殖的抑制作用。方法:復(fù)制SD大鼠高脂血癥模型,免疫組化技術(shù)檢測(cè)其胸主動(dòng)脈壁SFRP4的蛋白表達(dá);復(fù)制AngⅡ(0.1μM)誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞增殖模型,實(shí)驗(yàn)分組為:正常對(duì)照組,AngⅡ模型組,UA組(5μM,10μM,20μM),UA組均預(yù)給藥12h后加入AngⅡ造模24h,CCK-8法檢測(cè)該時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞增殖活性;RT-PCR和western blot技術(shù)檢測(cè)各組細(xì)胞SFRP4、β-catenin、Fox O3a、p27的m RNA和蛋白水平;免疫熒光技術(shù)觀測(cè)β-catenin的胞內(nèi)定位;首次應(yīng)用RNA干擾技術(shù),驗(yàn)證A7r5細(xì)胞通路級(jí)聯(lián)關(guān)系及UA的作用靶標(biāo),設(shè)計(jì)分組:AngⅡ模型組、模型+si-SFRP4組、模型+Wnt通路抑制劑XAV939(5μM,預(yù)孵育4h)組、UA組(20μM)、UA+si-SFRP4組、UA+Wnt通路激活劑Li Cl(500μM,預(yù)孵育4h)組;Western blot技術(shù)檢測(cè)干擾效率和目的蛋白表達(dá);采用SPSS 17.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)...
【文章來(lái)源】:青島大學(xué)山東省
【文章頁(yè)數(shù)】:67 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【文章目錄】:
中文摘要
Abstract
英文縮略詞表
引言
第一章 實(shí)驗(yàn)材料
1.1 受試動(dòng)物和受試細(xì)胞
1.2 主要試劑和材料
1.3 主要儀器與耗材
第二章 實(shí)驗(yàn)方法
2.1 動(dòng)物模型的建立
2.2 免疫組織化學(xué)技術(shù)
2.3 細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)
2.3.1 細(xì)胞的培養(yǎng)傳代
2.3.2 細(xì)胞的凍存
2.3.3 細(xì)胞的復(fù)蘇
2.4 CCK-8 檢測(cè)技術(shù)
2.4.1 復(fù)制AngⅡ誘導(dǎo)平滑肌細(xì)胞增殖模型
2.4.2 測(cè)定熊果酸對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)平滑肌細(xì)胞增殖的影響
2.4.3 轉(zhuǎn)染si-SFRP4對(duì)模型組和給藥組細(xì)胞活力的影響
2.4.4 Wnt通路抑制劑XAV939和激活劑LiCl的毒性檢測(cè)
2.5 熒光定量PCR技術(shù)
2.5.1 RNA的提取
2.5.2 逆轉(zhuǎn)錄
2.5.3 RTFQ-PCR
2.6 Western Blot 技術(shù)檢測(cè)蛋白表達(dá)
2.6.1 細(xì)胞總蛋白的提取和濃度測(cè)定
2.6.2 Western blotting具體步驟
2.6.3 Western blot數(shù)據(jù)處理
2.7 siRNA轉(zhuǎn)染A7r5細(xì)胞
2.7.1 轉(zhuǎn)染效率的考察
2.7.2 轉(zhuǎn)染后的蛋白檢測(cè)
2.8 免疫熒光技術(shù)
2.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
第三章 實(shí)驗(yàn)結(jié)果
3.1 免疫組化結(jié)果
3.2 CCK-8 檢測(cè)細(xì)胞活力
3.2.1 AngⅡ造模濃度的篩選
3.2.2 UA有效保護(hù)濃度的篩選
3.2.3 轉(zhuǎn)染si-SFRP4對(duì)細(xì)胞增殖率的影響
3.2.4 Wnt通路抑制劑、激活劑的細(xì)胞毒性檢測(cè)
3.3 UA對(duì)通路中各分子的影響
3.3.1 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)SFRP4的mRNA及蛋白表達(dá)的影響
3.3.2 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)β-catenin的mRNA及蛋白表達(dá)的影響
3.3.3 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)FoxO3a的mRNA及蛋白表達(dá)的影響183.3.4 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)p27的mRNA及蛋白表達(dá)的影響
3.4 SFRP4/wnt/β-catenin/Foxo3a/p27信號(hào)通路的驗(yàn)證
3.4.1 Western Blot檢測(cè)siRNA-SFRP4的基因沉默效率
3.4.2 Western Blot檢測(cè)si-SFRP4對(duì)模型組和UA組細(xì)胞中β-catenin蛋白表達(dá)水平的影響
3.4.3 Wnt通路抑制劑XAV939對(duì)Foxo3a/p27的影響
3.4.4 Wnt通路激動(dòng)劑LiCl對(duì)Foxo3a/p27的影響
3.5 免疫熒光結(jié)果
第四章 討論
結(jié)論
參考文獻(xiàn)
綜述
綜述參考文獻(xiàn)
攻讀學(xué)位期間的研究成果
致謝
本文編號(hào):3269468
【文章來(lái)源】:青島大學(xué)山東省
【文章頁(yè)數(shù)】:67 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【文章目錄】:
中文摘要
Abstract
英文縮略詞表
引言
第一章 實(shí)驗(yàn)材料
1.1 受試動(dòng)物和受試細(xì)胞
1.2 主要試劑和材料
1.3 主要儀器與耗材
第二章 實(shí)驗(yàn)方法
2.1 動(dòng)物模型的建立
2.2 免疫組織化學(xué)技術(shù)
2.3 細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)
2.3.1 細(xì)胞的培養(yǎng)傳代
2.3.2 細(xì)胞的凍存
2.3.3 細(xì)胞的復(fù)蘇
2.4 CCK-8 檢測(cè)技術(shù)
2.4.1 復(fù)制AngⅡ誘導(dǎo)平滑肌細(xì)胞增殖模型
2.4.2 測(cè)定熊果酸對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)平滑肌細(xì)胞增殖的影響
2.4.3 轉(zhuǎn)染si-SFRP4對(duì)模型組和給藥組細(xì)胞活力的影響
2.4.4 Wnt通路抑制劑XAV939和激活劑LiCl的毒性檢測(cè)
2.5 熒光定量PCR技術(shù)
2.5.1 RNA的提取
2.5.2 逆轉(zhuǎn)錄
2.5.3 RTFQ-PCR
2.6 Western Blot 技術(shù)檢測(cè)蛋白表達(dá)
2.6.1 細(xì)胞總蛋白的提取和濃度測(cè)定
2.6.2 Western blotting具體步驟
2.6.3 Western blot數(shù)據(jù)處理
2.7 siRNA轉(zhuǎn)染A7r5細(xì)胞
2.7.1 轉(zhuǎn)染效率的考察
2.7.2 轉(zhuǎn)染后的蛋白檢測(cè)
2.8 免疫熒光技術(shù)
2.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
第三章 實(shí)驗(yàn)結(jié)果
3.1 免疫組化結(jié)果
3.2 CCK-8 檢測(cè)細(xì)胞活力
3.2.1 AngⅡ造模濃度的篩選
3.2.2 UA有效保護(hù)濃度的篩選
3.2.3 轉(zhuǎn)染si-SFRP4對(duì)細(xì)胞增殖率的影響
3.2.4 Wnt通路抑制劑、激活劑的細(xì)胞毒性檢測(cè)
3.3 UA對(duì)通路中各分子的影響
3.3.1 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)SFRP4的mRNA及蛋白表達(dá)的影響
3.3.2 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)β-catenin的mRNA及蛋白表達(dá)的影響
3.3.3 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)FoxO3a的mRNA及蛋白表達(dá)的影響183.3.4 UA對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的A7r5細(xì)胞內(nèi)p27的mRNA及蛋白表達(dá)的影響
3.4 SFRP4/wnt/β-catenin/Foxo3a/p27信號(hào)通路的驗(yàn)證
3.4.1 Western Blot檢測(cè)siRNA-SFRP4的基因沉默效率
3.4.2 Western Blot檢測(cè)si-SFRP4對(duì)模型組和UA組細(xì)胞中β-catenin蛋白表達(dá)水平的影響
3.4.3 Wnt通路抑制劑XAV939對(duì)Foxo3a/p27的影響
3.4.4 Wnt通路激動(dòng)劑LiCl對(duì)Foxo3a/p27的影響
3.5 免疫熒光結(jié)果
第四章 討論
結(jié)論
參考文獻(xiàn)
綜述
綜述參考文獻(xiàn)
攻讀學(xué)位期間的研究成果
致謝
本文編號(hào):3269468
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