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剛地弓形蟲Prx體外抗氧化機(jī)制研究

發(fā)布時(shí)間:2017-06-02 20:23

  本文關(guān)鍵詞:剛地弓形蟲Prx體外抗氧化機(jī)制研究,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:目的:原核表達(dá)剛地弓形蟲(Toxoplasma gondii)過氧化物氧化還原酶(peroxiredoxin,Prx)的基因,并制備多克隆抗體。使弓形蟲Prx基因在Hep G2細(xì)胞過表達(dá),不同終濃度H2O2誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,通過測(cè)定細(xì)胞的ROS生成量的變化來探討Prx在細(xì)胞抗氧化中所起的作用以及作用機(jī)制。方法:構(gòu)建原核表達(dá)載體Prx/p ET-28a(+)使之在大腸埃希氏菌(E.coil)Rosetta株中表達(dá),通過對(duì)重組蛋白誘導(dǎo)表達(dá)時(shí)間、濃度和溫度的優(yōu)化及純化,用純化后的重組蛋白免疫家兔得到多克隆抗體,用Wesstern blotting的方法鑒定多克隆抗體的特異性。構(gòu)建真核表達(dá)載體Prx/p3XFLAG-Myc-CMVTM-24使之在Hep G2細(xì)胞中表達(dá),通過大量提取無內(nèi)毒素質(zhì)粒,利用非脂質(zhì)陽離子聚合物Ronfect TM試劑將質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至Hep G2細(xì)胞中,在24 h、48 h和72 h收集轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,用抗Prx多克隆抗體通過Wenstern blotting的方法檢測(cè)Prx基因在Hep G2細(xì)胞的表達(dá)。24孔板接種培養(yǎng)Hep G2細(xì)胞24 h后,分別轉(zhuǎn)染空載p3XFLAG-Myc-CMVTM-24質(zhì)粒(空載轉(zhuǎn)染組)和真核表達(dá)重組質(zhì)粒Prx/p3XFLAG-Myc-CMVTM-24(轉(zhuǎn)染組),收集細(xì)胞前24 h加入終濃度為200μmol/L、400μmol/L、800μmol/L和1 600μmol/L的H2O2誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。于轉(zhuǎn)染后48 h收集細(xì)胞,對(duì)細(xì)胞懸液用Annexin V-FITC/PI染色,利用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率。用DCFH-DA染色,利用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞活性氧的生成量。結(jié)果:原核表達(dá)獲取的多克隆抗體經(jīng)過Wenstern blotting方法鑒定證明有很好的特異性,可用于后續(xù)試驗(yàn)。轉(zhuǎn)染后24 h、48 h和72 h的Hep G2細(xì)胞,用Wenstern blotting方法在25 KDa處檢測(cè)到有特異性行條帶出現(xiàn),與Prx理論大小相符,且Prx在48 h表達(dá)量最高。轉(zhuǎn)染后48 h,H2O2終濃度為200μmol/L、400μmol/L和800μmol/L轉(zhuǎn)染組的凋亡率均低于轉(zhuǎn)染空載組的凋亡率,兩組差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P0.05),終濃度為1 600μmol/L的轉(zhuǎn)染組的凋亡率和轉(zhuǎn)染空載組的凋亡率無明顯差別。轉(zhuǎn)染后48 h,H2O2終濃度為200μmol/L、400μmol/L和800μmol/L的轉(zhuǎn)染組的ROS的生成量低于空載組ROS的生成量,兩組差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P0.05),終濃度為1 600μmol/L的轉(zhuǎn)染組的ROS生成量和空載組的ROS生成量無明顯差別。結(jié)論:成功構(gòu)建原核表達(dá)載體Prx/p ET-28a(+)并在Rosetta中大量表達(dá),得到純化后的重組蛋白,免疫家兔獲得多克隆抗體,Wenstern blotting技術(shù)鑒定多克隆抗體有很好的特異性。成功構(gòu)建真核表達(dá)載體,Prx蛋白在Hep G2細(xì)胞過表達(dá),且轉(zhuǎn)染后48 h表達(dá)量最高。弓形蟲Prx具有抗氧化作用,其作用機(jī)制是,通過消除細(xì)胞內(nèi)的ROS,從而減少氧化應(yīng)激對(duì)蟲體的損害,達(dá)到抗氧化的目的。
【關(guān)鍵詞】:剛地弓形蟲 過氧化物氧化還原酶 HepG2 細(xì)胞凋亡 ROS
【學(xué)位授予單位】:江蘇大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2016
【分類號(hào)】:R382.5
【目錄】:
  • 摘要5-7
  • ABSTRACT7-9
  • 主要縮略詞表9-14
  • 第一章 緒論14-18
  • 1.1 弓形蟲的致病機(jī)制14-15
  • 1.2 Prx的研究現(xiàn)狀15-16
  • 1.3 細(xì)胞凋亡的機(jī)制和誘導(dǎo)因素16
  • 1.4 弓形蟲感染抑制細(xì)胞凋亡16-17
  • 1.5 本研究的意義17-18
  • 第二章 弓形蟲PRX基因的原核表達(dá)及鑒定18-36
  • 2.1 實(shí)驗(yàn)儀器和材料18-22
  • 2.1.1 實(shí)驗(yàn)儀器18-19
  • 2.1.2 實(shí)驗(yàn)材料19
  • 2.1.3 實(shí)驗(yàn)試劑19-20
  • 2.1.4 相關(guān)試劑的配制20-22
  • 2.1.5 菌株和載體22
  • 2.1.6 細(xì)胞和蟲體22
  • 2.2 實(shí)驗(yàn)方法22-30
  • 2.2.1 He La細(xì)胞系的傳代培養(yǎng)和蟲體的傳代培養(yǎng)22
  • 2.2.2 弓形蟲Prx基因的擴(kuò)增22-24
  • 2.2.3 重組載體Prx/p TG19-T的構(gòu)建和鑒定24-26
  • 2.2.4 重組表達(dá)載體Prx/p ET-28a(+)的構(gòu)建與鑒定26-28
  • 2.2.5 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)和可溶性分析28
  • 2.2.6 重組蛋白的純化28-29
  • 2.2.7 兔多克隆抗體的制備和鑒定29-30
  • 2.3 結(jié)果30-34
  • 2.3.1 弓形蟲Prx基因擴(kuò)增結(jié)果30-31
  • 2.3.2 重組Prx/p TG19-T質(zhì)粒的鑒定31
  • 2.3.3 重組質(zhì)粒Prx/p ET-28a(+)的雙酶切鑒定31-32
  • 2.3.4 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)32-33
  • 2.3.5 重組蛋白的純化33
  • 2.3.6 多克隆抗體的鑒定33-34
  • 2.4 討論34-36
  • 第三章 弓形蟲P3×FLAG-MYC-CMVTM24PRX在HEPG2細(xì)胞中表達(dá)36-46
  • 3.1 實(shí)驗(yàn)材料和儀器36-37
  • 3.1.1 實(shí)驗(yàn)材料36
  • 3.1.2 實(shí)驗(yàn)試劑36
  • 3.1.3 實(shí)驗(yàn)儀器36
  • 3.1.4 細(xì)胞株和菌株36-37
  • 3.1.5 相關(guān)試劑的配制37
  • 3.2 實(shí)驗(yàn)方法37-42
  • 3.2.1 弓形蟲Prx基因的擴(kuò)增37
  • 3.2.2 重組載體Prx/p TG19-T的構(gòu)建與鑒定37-38
  • 3.2.3 重組表達(dá)載體Prx/p3×FLAG-Myc-CMVTM-24 的構(gòu)建與鑒定38-39
  • 3.2.4 真核表達(dá)質(zhì)粒Prx/p3×FLAG-Myc-CMVTM-24 的大量提取39-40
  • 3.2.5 Hep G2細(xì)胞的復(fù)蘇和傳代40-41
  • 3.2.6 p3×FLAG-Myc-CMVTM24Prx轉(zhuǎn)染Hep G2細(xì)胞41-42
  • 3.2.7 Western blotting技術(shù)檢測(cè)Prx的表達(dá)42
  • 3.3 結(jié)果42-44
  • 3.3.1 弓形蟲Prx基因擴(kuò)增結(jié)果42-43
  • 3.3.2 重組載體Prx/p TG19-T的單酶切鑒定結(jié)果43
  • 3.3.3 重組真核表達(dá)質(zhì)粒Prx/p3×FLAG-Myc-CMVTM-24 的雙酶切鑒定43-44
  • 3.3.4 Western blotting技術(shù)檢測(cè)Prx在Hep G2細(xì)胞中的表達(dá)44
  • 3.4 討論44-46
  • 第四章 弓形蟲PRX體外抗氧化研究46-56
  • 4.1 實(shí)驗(yàn)儀器和材料46-47
  • 4.1.1 實(shí)驗(yàn)儀器46-47
  • 4.1.2 實(shí)驗(yàn)材料47
  • 4.1.3 實(shí)驗(yàn)試劑47
  • 4.1.4 試劑配制47
  • 4.1.5 細(xì)胞47
  • 4.2 實(shí)驗(yàn)方法47-49
  • 4.2.1 Hep G2細(xì)胞的復(fù)蘇和傳代47
  • 4.2.2 Hep G2細(xì)胞的轉(zhuǎn)染與凋亡誘導(dǎo)47-48
  • 4.2.3 Annexin V-FITC/PI法檢測(cè)細(xì)胞凋亡48-49
  • 4.2.4 細(xì)胞ROS檢測(cè)49
  • 4.2.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)49
  • 4.3 實(shí)驗(yàn)結(jié)果49-52
  • 4.3.1 Annexin V-FITC/PI檢測(cè)細(xì)胞凋亡率的結(jié)果49
  • 4.3.2 細(xì)胞ROS檢測(cè)的結(jié)果49-52
  • 4.4 討論52-56
  • 結(jié)論與展望56-58
  • 參考文獻(xiàn)58-66
  • 致謝66-68
  • 在學(xué)期間發(fā)表的學(xué)術(shù)論文及參加課題:68-69

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