骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞體外擴(kuò)增及其與神經(jīng)類(lèi)細(xì)胞共培養(yǎng)的研究
發(fā)布時(shí)間:2025-05-11 07:13
中樞神經(jīng)系統(tǒng)(central nervous system, CNS)疾病與損傷,如帕金森病(Parkinson's disease, PD)、脊髓損傷等比較難以自我修復(fù),神經(jīng)干細(xì)胞(neural stem cells, NSCs)移植被認(rèn)為是具有潛在應(yīng)用價(jià)值的治療手段,但NSCs來(lái)源困難。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BMSCs)以其多分化潛能、可源于自體、免疫源性低、易擴(kuò)增、能分泌多種細(xì)胞因子并參與細(xì)胞微環(huán)境的構(gòu)建等優(yōu)勢(shì),為CNS疾病與損傷的治療提供了一個(gè)新的思路。本文旨在研究BMSCs擴(kuò)增后通過(guò)與NSCs之間的相互作用促進(jìn)PD體外實(shí)驗(yàn)細(xì)胞模型的修復(fù),進(jìn)一步為BMSCs移植治療與修復(fù)CNS疾病與損傷提供相應(yīng)的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。 本文首先采用膠原凝膠、中空纖維膜(hollow fiber membranes, HFMs)和自行研發(fā)設(shè)計(jì)的氣升式環(huán)流生物反應(yīng)器(air-lift loop bioreactor, ALB),建立一種可使細(xì)胞免受剪切力損傷的三維動(dòng)態(tài)擴(kuò)增體系,將BMSCs在體外先行擴(kuò)增。在擴(kuò)增的過(guò)程中,通過(guò)取樣檢測(cè)吸光度...
【文章頁(yè)數(shù)】:137 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
引言
1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)及其促進(jìn)神經(jīng)修復(fù)的研究簡(jiǎn)介
1.1 概述
1.2 BMSCs生物學(xué)性能簡(jiǎn)介
1.2.1 BMSCs的發(fā)現(xiàn)、定義
1.2.2 BMSCs的生物學(xué)特性
1.2.3 BMSCs的主要表面標(biāo)志
1.2.4 BMSCs的多向分化潛能
1.2.5 BMSCs的旁分泌功能
1.2.6 BMSCs體外擴(kuò)增研究進(jìn)展
1.3 BMSCs促進(jìn)神經(jīng)修復(fù)的相關(guān)研究
1.3.1 BMSCs移植治療CNS疾病及存在的問(wèn)題
1.3.2 BMSCs促進(jìn)神經(jīng)修復(fù)的作用機(jī)理
1.3.3 BMSCs與NSCs相互作用的研究
1.4 帕金森病細(xì)胞模型
1.4.1 細(xì)胞凋亡與帕金森病
1.4.2 細(xì)胞凋亡模型建立方法
1.5 本文的選題依據(jù)和研究?jī)?nèi)容
2 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的獲取及體外三維動(dòng)態(tài)培養(yǎng)與擴(kuò)增
2.1 引言
2.2 實(shí)驗(yàn)儀器與材料
2.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
2.2.2 藥品與試劑
2.2.3 溶液與試劑的配制
2.3 實(shí)驗(yàn)方法
2.3.1 BMSCs的分離與培養(yǎng)
2.3.2 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
2.3.3 膠原凝膠的微觀結(jié)構(gòu)
2.3.4 BMSCs的準(zhǔn)備
2.3.5 BMSCs在ALHFMB內(nèi)三維動(dòng)態(tài)擴(kuò)增
2.3.6 細(xì)胞增殖
2.3.7 代謝分析
2.3.8 ALHFMB內(nèi)氧、二氧化碳分壓及pH值測(cè)定
2.3.9 支架內(nèi)細(xì)胞活性檢測(cè)
2.3.10 支架內(nèi)細(xì)胞形態(tài)觀察
2.3.11 干細(xì)胞表面特異性標(biāo)記檢測(cè)
2.3.12 多向分化潛能的檢測(cè)
2.3.13 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2.4 結(jié)果
2.4.1 原代及傳代培養(yǎng)的BMSCs生長(zhǎng)形態(tài)
2.4.2 膠原凝膠的微觀結(jié)構(gòu)
2.4.3 細(xì)胞增殖
2.4.4 支架內(nèi)細(xì)胞的代謝
2.4.5 ALHFMB內(nèi)氧、二氧化碳分壓及pH值
2.4.6 支架內(nèi)細(xì)胞活性
2.4.7 支架內(nèi)細(xì)胞的形態(tài)
2.4.8 細(xì)胞表面特異性蛋白的表達(dá)
2.4.9 擴(kuò)增細(xì)胞的多向分化潛能
2.5 討論
2.6 小結(jié)
3 BMSCs與三維條件下NSCs相互作用的研究
3.1 引言
3.2 實(shí)驗(yàn)儀器與材料
3.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
3.2.2 藥品與試劑
3.2.3 溶液與試劑的配制
3.3 實(shí)驗(yàn)方法
3.3.1 BMSCs的分離、培養(yǎng)、擴(kuò)增及鑒定
3.3.2 NSCs的分離與培養(yǎng)
3.3.3 NSCs誘導(dǎo)分化及免疫組織化學(xué)鑒定
3.3.4 海藻酸鈣膠珠的制備
3.3.5 NSCs微囊化培養(yǎng)
3.3.6 BMSCs與NSCs共培養(yǎng)
3.3.7 增殖共培養(yǎng)后BMSCs對(duì)NSCs的影響
3.3.8 分化共培養(yǎng)后NSCs的流式細(xì)胞儀檢測(cè)
3.3.9 增殖共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.3.10 分化共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.3.11 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
3.4 結(jié)果
3.4.1 NSCs的原代及傳代培養(yǎng)
3.4.2 NSCs免疫組織化學(xué)及誘導(dǎo)分化鑒定
3.4.3 適宜NSCs生長(zhǎng)的海藻酸鈣膠珠
3.4.4 NSCs微囊化培養(yǎng)
3.4.5 增殖共培養(yǎng)后BMSCs對(duì)NSCs的影響
3.4.6 分化共培養(yǎng)后BMSCs對(duì)NSCs的影響
3.4.7 增殖共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.4.8 分化共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.5 討論
3.6 小結(jié)
4 BMSCs在NSCs保護(hù)去血清誘導(dǎo)PC12細(xì)胞凋亡中的作用
4.1 引言
4.2 實(shí)驗(yàn)儀器與材料
4.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
4.2.2 藥品與試劑
4.2.3 藥品與試劑的配制
4.3 實(shí)驗(yàn)方法
4.3.1 BMSCs的分離、培養(yǎng)、擴(kuò)增及鑒定
4.3.2 NSCs的分離、培養(yǎng)與鑒定
4.3.3 PC12細(xì)胞的培養(yǎng)及去血清誘導(dǎo)凋亡模型的建立
4.3.4 海藻酸鈣膠珠與PC12細(xì)胞的生物相容性
4.3.5 NSCs對(duì)去血清誘導(dǎo)PC12細(xì)胞凋亡的保護(hù)作用
4.3.6 BMSCs在NSCs保護(hù)去血清誘導(dǎo)PC 12細(xì)胞凋亡中的作用
4.3.7 Hoechst 33342染色分析
4.3.8 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞凋亡率
4.3.9 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞周期
4.3.10 培養(yǎng)基中GDNF濃度的測(cè)定
4.3.11 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
4.4 結(jié)果
4.4.1 PC12細(xì)胞的培養(yǎng)及去血清誘導(dǎo)凋亡模型
4.4.2 海藻酸鈣膠珠與PC12細(xì)胞的生物相容性
4.4.3 單獨(dú)NSCs對(duì)去血清誘導(dǎo)凋亡的PC12細(xì)胞存活率的作用
4.4.4 BMSCs與NSCs對(duì)誘導(dǎo)凋亡的PC12細(xì)胞存活率的共同作用
4.4.5 Hoechst 33342染色分析
4.4.6 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞凋亡率
4.4.7 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞周期
4.4.8 不同培養(yǎng)條件下培養(yǎng)基中GDNF濃度的比較
4.5 討論
4.6 小結(jié)
結(jié)論
工作展望
創(chuàng)新點(diǎn)摘要
參考文獻(xiàn)
附錄A 英文縮略詞
作者簡(jiǎn)介
致謝
本文編號(hào):4045044
【文章頁(yè)數(shù)】:137 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
引言
1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)及其促進(jìn)神經(jīng)修復(fù)的研究簡(jiǎn)介
1.1 概述
1.2 BMSCs生物學(xué)性能簡(jiǎn)介
1.2.1 BMSCs的發(fā)現(xiàn)、定義
1.2.2 BMSCs的生物學(xué)特性
1.2.3 BMSCs的主要表面標(biāo)志
1.2.4 BMSCs的多向分化潛能
1.2.5 BMSCs的旁分泌功能
1.2.6 BMSCs體外擴(kuò)增研究進(jìn)展
1.3 BMSCs促進(jìn)神經(jīng)修復(fù)的相關(guān)研究
1.3.1 BMSCs移植治療CNS疾病及存在的問(wèn)題
1.3.2 BMSCs促進(jìn)神經(jīng)修復(fù)的作用機(jī)理
1.3.3 BMSCs與NSCs相互作用的研究
1.4 帕金森病細(xì)胞模型
1.4.1 細(xì)胞凋亡與帕金森病
1.4.2 細(xì)胞凋亡模型建立方法
1.5 本文的選題依據(jù)和研究?jī)?nèi)容
2 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的獲取及體外三維動(dòng)態(tài)培養(yǎng)與擴(kuò)增
2.1 引言
2.2 實(shí)驗(yàn)儀器與材料
2.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
2.2.2 藥品與試劑
2.2.3 溶液與試劑的配制
2.3 實(shí)驗(yàn)方法
2.3.1 BMSCs的分離與培養(yǎng)
2.3.2 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
2.3.3 膠原凝膠的微觀結(jié)構(gòu)
2.3.4 BMSCs的準(zhǔn)備
2.3.5 BMSCs在ALHFMB內(nèi)三維動(dòng)態(tài)擴(kuò)增
2.3.6 細(xì)胞增殖
2.3.7 代謝分析
2.3.8 ALHFMB內(nèi)氧、二氧化碳分壓及pH值測(cè)定
2.3.9 支架內(nèi)細(xì)胞活性檢測(cè)
2.3.10 支架內(nèi)細(xì)胞形態(tài)觀察
2.3.11 干細(xì)胞表面特異性標(biāo)記檢測(cè)
2.3.12 多向分化潛能的檢測(cè)
2.3.13 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2.4 結(jié)果
2.4.1 原代及傳代培養(yǎng)的BMSCs生長(zhǎng)形態(tài)
2.4.2 膠原凝膠的微觀結(jié)構(gòu)
2.4.3 細(xì)胞增殖
2.4.4 支架內(nèi)細(xì)胞的代謝
2.4.5 ALHFMB內(nèi)氧、二氧化碳分壓及pH值
2.4.6 支架內(nèi)細(xì)胞活性
2.4.7 支架內(nèi)細(xì)胞的形態(tài)
2.4.8 細(xì)胞表面特異性蛋白的表達(dá)
2.4.9 擴(kuò)增細(xì)胞的多向分化潛能
2.5 討論
2.6 小結(jié)
3 BMSCs與三維條件下NSCs相互作用的研究
3.1 引言
3.2 實(shí)驗(yàn)儀器與材料
3.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
3.2.2 藥品與試劑
3.2.3 溶液與試劑的配制
3.3 實(shí)驗(yàn)方法
3.3.1 BMSCs的分離、培養(yǎng)、擴(kuò)增及鑒定
3.3.2 NSCs的分離與培養(yǎng)
3.3.3 NSCs誘導(dǎo)分化及免疫組織化學(xué)鑒定
3.3.4 海藻酸鈣膠珠的制備
3.3.5 NSCs微囊化培養(yǎng)
3.3.6 BMSCs與NSCs共培養(yǎng)
3.3.7 增殖共培養(yǎng)后BMSCs對(duì)NSCs的影響
3.3.8 分化共培養(yǎng)后NSCs的流式細(xì)胞儀檢測(cè)
3.3.9 增殖共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.3.10 分化共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.3.11 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
3.4 結(jié)果
3.4.1 NSCs的原代及傳代培養(yǎng)
3.4.2 NSCs免疫組織化學(xué)及誘導(dǎo)分化鑒定
3.4.3 適宜NSCs生長(zhǎng)的海藻酸鈣膠珠
3.4.4 NSCs微囊化培養(yǎng)
3.4.5 增殖共培養(yǎng)后BMSCs對(duì)NSCs的影響
3.4.6 分化共培養(yǎng)后BMSCs對(duì)NSCs的影響
3.4.7 增殖共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.4.8 分化共培養(yǎng)后NSCs對(duì)BMSCs的影響
3.5 討論
3.6 小結(jié)
4 BMSCs在NSCs保護(hù)去血清誘導(dǎo)PC12細(xì)胞凋亡中的作用
4.1 引言
4.2 實(shí)驗(yàn)儀器與材料
4.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
4.2.2 藥品與試劑
4.2.3 藥品與試劑的配制
4.3 實(shí)驗(yàn)方法
4.3.1 BMSCs的分離、培養(yǎng)、擴(kuò)增及鑒定
4.3.2 NSCs的分離、培養(yǎng)與鑒定
4.3.3 PC12細(xì)胞的培養(yǎng)及去血清誘導(dǎo)凋亡模型的建立
4.3.4 海藻酸鈣膠珠與PC12細(xì)胞的生物相容性
4.3.5 NSCs對(duì)去血清誘導(dǎo)PC12細(xì)胞凋亡的保護(hù)作用
4.3.6 BMSCs在NSCs保護(hù)去血清誘導(dǎo)PC 12細(xì)胞凋亡中的作用
4.3.7 Hoechst 33342染色分析
4.3.8 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞凋亡率
4.3.9 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞周期
4.3.10 培養(yǎng)基中GDNF濃度的測(cè)定
4.3.11 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
4.4 結(jié)果
4.4.1 PC12細(xì)胞的培養(yǎng)及去血清誘導(dǎo)凋亡模型
4.4.2 海藻酸鈣膠珠與PC12細(xì)胞的生物相容性
4.4.3 單獨(dú)NSCs對(duì)去血清誘導(dǎo)凋亡的PC12細(xì)胞存活率的作用
4.4.4 BMSCs與NSCs對(duì)誘導(dǎo)凋亡的PC12細(xì)胞存活率的共同作用
4.4.5 Hoechst 33342染色分析
4.4.6 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞凋亡率
4.4.7 流式細(xì)胞儀分析PC12細(xì)胞周期
4.4.8 不同培養(yǎng)條件下培養(yǎng)基中GDNF濃度的比較
4.5 討論
4.6 小結(jié)
結(jié)論
工作展望
創(chuàng)新點(diǎn)摘要
參考文獻(xiàn)
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致謝
本文編號(hào):4045044
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