取食雙鏈RNA對山楂葉螨的基因干擾和沉默效率研究
發(fā)布時間:2021-10-17 08:06
山楂葉螨(Amphitetranychus viennensis)是我國果樹重要葉面害蟲,由于長期大量使用化學(xué)殺螨劑而產(chǎn)生了嚴(yán)重的抗藥性問題。因此,急需尋找新的防治方法。RNA干擾(RNAi)技術(shù)作為新興的生物技術(shù),逐漸在害蟲防治領(lǐng)域得到應(yīng)用。但是要將這一技術(shù)應(yīng)用于山楂葉螨的防治,首先要獲得RNAi的靶標(biāo)基因并檢測干擾效率。本文對山楂葉螨進(jìn)行了轉(zhuǎn)錄組測序,共得到10 GB Clean Data,34,631條Unigene,其中20,398個得到功能注釋;數(shù)據(jù)質(zhì)量經(jīng)過單堿基質(zhì)量、Base content分布、GC content分布和Sequence base quality四個指標(biāo)評定,表明測序結(jié)果良好。通過對轉(zhuǎn)錄組學(xué)數(shù)據(jù)庫的深入分析,獲得高通量的潛在靶標(biāo)基因。在山楂葉螨轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中搜索后獲得山楂葉螨ATPase A基因序列。利用PCR擴(kuò)增獲得編碼山楂葉螨V-ATPase A的基因片段。以這一持家基因為靶標(biāo),驗證山楂葉螨RNAi方法的可行性。本研究共嘗試了3種山楂葉螨RNAi方法:葉柄吸收法、葉片吸收法和烘干葉片吸收法。結(jié)果表明烘干葉片吸收法效果最佳。隨后我們在山楂葉螨轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中獲...
【文章來源】:山西大學(xué)山西省
【文章頁數(shù)】:70 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【部分圖文】:
圖2.1分析流程
第三章山楂葉螨RNAi方法建立25圖3.1三種喂食山楂葉螨dsRNA的方法Fig.3.1ThreemethodsoffeedingdsRNAforA.viennensis注:A:方法一Method1;B:方法二Method2;C:方法三Method33.3.2沉默效率檢測每個處理組取20頭山楂葉螨提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,方法同3.1.2。用實時定量PCR檢測目標(biāo)基因表達(dá)量的變化,反應(yīng)體系如下:表3.8RT-qPCR反應(yīng)體系Tab.3.8RT-qPCRreactionsystem2×SYBRGreen10μl10μM正向引物0.32μl10μM反向引物0.32μlcDNA模板1.6μlddH2O7.76μlTotal20μl以上體系所使用的引物見表3.5,以GAPDH為內(nèi)參基因,熒光定量PCR程序:95℃30s;95℃5s,60℃31s,循環(huán)數(shù)為40;95℃15s,60℃1min,95℃15s,60℃15s。程序結(jié)束后導(dǎo)出數(shù)據(jù),采用2-△△CT法計算其相對表達(dá)量,并對實驗數(shù)值差異顯著性分析。3.4實驗結(jié)果與分析3.4.1山楂葉螨AvATPaseA基因片段克隆在轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中獲得山楂葉螨AvATPase基因cDNA以后,找到其1866bp長度的開放閱讀框。用Primer5.0軟件在開放閱讀框中設(shè)計用于合成dsRNA基因片段的引物和RT-qPCR引物。PCR擴(kuò)增后瓊脂糖凝膠電泳檢測目的條帶(圖3.2),將所得片段與T載體連接,得到含有目的基因的克隆載體。
取食雙鏈RNA對山楂葉螨的基因干擾和沉默效率研究26圖3.2山楂葉螨AvATPaseA基因片段的PCR擴(kuò)增Fig.3.2ThePCRamplificationofAvATPaseAgenefragmentfromA.viennensis注:M:DL5000DNAmarker;1:AvATPaseA的擴(kuò)增產(chǎn)物CloningofAvATPaseA3.4.2山楂葉螨不同喂食方法的沉默效率對山楂葉螨dsRNA處理后,收集不同處理組的山楂葉螨樣本,提取總RNA并反轉(zhuǎn)錄,將cDNA稀釋20倍作為模板進(jìn)行實時熒光定量。RT-qPCR分析結(jié)果顯示,3種方法對AvATPaseA的沉默效率如圖所示(圖3.3)。
本文編號:3441424
【文章來源】:山西大學(xué)山西省
【文章頁數(shù)】:70 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【部分圖文】:
圖2.1分析流程
第三章山楂葉螨RNAi方法建立25圖3.1三種喂食山楂葉螨dsRNA的方法Fig.3.1ThreemethodsoffeedingdsRNAforA.viennensis注:A:方法一Method1;B:方法二Method2;C:方法三Method33.3.2沉默效率檢測每個處理組取20頭山楂葉螨提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,方法同3.1.2。用實時定量PCR檢測目標(biāo)基因表達(dá)量的變化,反應(yīng)體系如下:表3.8RT-qPCR反應(yīng)體系Tab.3.8RT-qPCRreactionsystem2×SYBRGreen10μl10μM正向引物0.32μl10μM反向引物0.32μlcDNA模板1.6μlddH2O7.76μlTotal20μl以上體系所使用的引物見表3.5,以GAPDH為內(nèi)參基因,熒光定量PCR程序:95℃30s;95℃5s,60℃31s,循環(huán)數(shù)為40;95℃15s,60℃1min,95℃15s,60℃15s。程序結(jié)束后導(dǎo)出數(shù)據(jù),采用2-△△CT法計算其相對表達(dá)量,并對實驗數(shù)值差異顯著性分析。3.4實驗結(jié)果與分析3.4.1山楂葉螨AvATPaseA基因片段克隆在轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中獲得山楂葉螨AvATPase基因cDNA以后,找到其1866bp長度的開放閱讀框。用Primer5.0軟件在開放閱讀框中設(shè)計用于合成dsRNA基因片段的引物和RT-qPCR引物。PCR擴(kuò)增后瓊脂糖凝膠電泳檢測目的條帶(圖3.2),將所得片段與T載體連接,得到含有目的基因的克隆載體。
取食雙鏈RNA對山楂葉螨的基因干擾和沉默效率研究26圖3.2山楂葉螨AvATPaseA基因片段的PCR擴(kuò)增Fig.3.2ThePCRamplificationofAvATPaseAgenefragmentfromA.viennensis注:M:DL5000DNAmarker;1:AvATPaseA的擴(kuò)增產(chǎn)物CloningofAvATPaseA3.4.2山楂葉螨不同喂食方法的沉默效率對山楂葉螨dsRNA處理后,收集不同處理組的山楂葉螨樣本,提取總RNA并反轉(zhuǎn)錄,將cDNA稀釋20倍作為模板進(jìn)行實時熒光定量。RT-qPCR分析結(jié)果顯示,3種方法對AvATPaseA的沉默效率如圖所示(圖3.3)。
本文編號:3441424
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