復(fù)合膠原/rhBMP-2殼聚糖微球的3D打印多孔羥基磷灰石支架的制備及其異位成骨研究
發(fā)布時(shí)間:2021-02-27 21:07
第一部分香草醛交聯(lián)rhBMP-2/殼聚糖微球的制備及其對(duì)間充質(zhì)干細(xì)胞的影響研究背景:RhBMP-2是一種重要的骨誘導(dǎo)活性蛋白,它在體內(nèi)具有很強(qiáng)的誘導(dǎo)骨組織生成的能力。而既往的研究表明rhBMP-2在體內(nèi)的釋放模式對(duì)其誘導(dǎo)成骨的作用具有重要的影響,rhBMP-2早期的突釋結(jié)合后期的持續(xù)釋放較短時(shí)間大劑量釋放能夠更高效的誘導(dǎo)骨組織生成。殼聚糖是一種來(lái)源廣泛的天然生物材料,具有良好的生物相容性,它可作為許多細(xì)胞因子的緩釋載體。同時(shí)香草醛與傳統(tǒng)的交聯(lián)劑(戊二醛等)相比生物相容性更好。因此用香草醛為交聯(lián)劑有可能制備出生物相容性更好,且具有良好緩釋性能的rhBMP-2/殼聚糖微球。目的:以香草醛為交聯(lián)劑來(lái)制備rhBMP-2/殼聚糖微球,明確該微球在體外rhBMP-2的緩釋性能,并且明確微球緩釋的rhBMP-2對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的影響。方法:利用乳化交聯(lián)法來(lái)制備包載rhBMP-2的殼聚糖微球,用電鏡觀(guān)察微球的形態(tài)。以微球浸提液為實(shí)驗(yàn)組,以空白培養(yǎng)基為對(duì)照組來(lái)培養(yǎng)人間充質(zhì)干細(xì)胞,以檢測(cè)微球的細(xì)胞毒性和對(duì)細(xì)胞增殖的影響。用動(dòng)態(tài)浸泡的方法來(lái)檢測(cè)rhBMP-2的體外釋放特征。通過(guò)比較緩釋3天和7天獲取的微球...
【文章來(lái)源】:北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院北京市 211工程院校 985工程院校
【文章頁(yè)數(shù)】:71 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【部分圖文】:
圖1:掃描電鏡觀(guān)察合成微球的形貌??.?-
??的釋放量最大(254.06±%.19ng/mL)(如圖2所示),呈現(xiàn)突釋效應(yīng);拢停校??的釋放速度隨著時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸下降。到第19天測(cè)得的緩釋液中rhBMP-2的濃??度為216.?14?+?20.?OOng/mL。緩釋?zhuān)保固炖鄯e釋放的rhBMP-2的含量約占39.?6%。??300?]??250?-?■■??-圓?i??1?200?-?^?T?■??疆巧。A丄I?I?I??II??Q?J___11M,,……I;纖齡H?HHL???inn?111?HH?IIM?HH.??1?3?5?7?10?14?19??時(shí)間/天??圖2.每個(gè)時(shí)間點(diǎn)收集的緩釋液濃度,結(jié)果表示為X±S,n=3。??4.?ALP活性檢測(cè)??為了檢測(cè)所包載的rhBMP-2是否還具有成骨誘導(dǎo)活性,本實(shí)驗(yàn)將rhBMP-2的??緩釋液與hMSCs細(xì)胞共培養(yǎng)7天,結(jié)果表明緩釋?zhuān)程炫c緩釋?zhuān)诽焖占木忈屢??均能夠促進(jìn)hMSCs細(xì)胞堿性碟酸酶活性的増高(分別為0.?504?+?0.?06日和0.?684??±?0.060?U?mol?pNPP/min/mg?protein?),與對(duì)照組(0.?135?±?0.011?y?mol??pNPP/min/mg?protein)相比有盈著性差異(八0.05)。并且緩釋?zhuān)诽旖M謗導(dǎo)細(xì)胞??表達(dá)的ALP活性較緩釋?zhuān)程旖M高(代0.?05)。??討論??人骨形態(tài)形成蛋白屬于轉(zhuǎn)化成生長(zhǎng)因子-目(Transforming?growth?factor??g
本研究W膠原為媒介,將香草酸交聯(lián)的rhBMP-2殼聚糖微球粘附于多孔??矮基磯灰石支架的表面,使所制各的HCC支架能夠逐漸的緩釋?zhuān)颍瑁拢停校泊??進(jìn)骨組織長(zhǎng)入HA支架內(nèi)部,模式圖如圖1所示。??2.2.1?膠原徐層?HA?支架的蒂!J備(HA/Collagen?scaffold,?HC)??將I型牛膠原溶解于己酸(化05M)溶液中,待膠原充分洛解后,用氨氧??化鋼溶液將PH調(diào)節(jié)至中性,用MES緩沖液將膠原溶液濃度調(diào)節(jié)為O.lg/ml,??將高溫蒸汽滅菌的HA支架浸入膠原溶解中浸泡化。將溶解于MES水中的??EDC和NHS加入上述膠原溶液中使最終濃度為2.5?mg/ml?EDC和0.63?mg/ml??NHS對(duì)膠原進(jìn)行交聯(lián)[1氣然后將吸附有膠原溶液的支架取出,在室溫下真空??干燥24小時(shí),然后用PBS水輕柔的沖洗支架2次,在室溫下真空干燥24小??時(shí)后,于-20°低溫冷凍保存,W上均在無(wú)菌的條件下進(jìn)行。??2.2.2?膠原/rhBMP-2?殼聚糖微球支架的制備(HA/Collagen/RhBMP-2?chitosan??microsphere?scaffold?,?HCC)??本實(shí)驗(yàn)用滴加的方法將微球與膠原/HA支架復(fù)合
本文編號(hào):3054800
【文章來(lái)源】:北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院北京市 211工程院校 985工程院校
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【學(xué)位級(jí)別】:博士
【部分圖文】:
圖1:掃描電鏡觀(guān)察合成微球的形貌??.?-
??的釋放量最大(254.06±%.19ng/mL)(如圖2所示),呈現(xiàn)突釋效應(yīng);拢停校??的釋放速度隨著時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸下降。到第19天測(cè)得的緩釋液中rhBMP-2的濃??度為216.?14?+?20.?OOng/mL。緩釋?zhuān)保固炖鄯e釋放的rhBMP-2的含量約占39.?6%。??300?]??250?-?■■??-圓?i??1?200?-?^?T?■??疆巧。A丄I?I?I??II??Q?J___11M,,……I;纖齡H?HHL???inn?111?HH?IIM?HH.??1?3?5?7?10?14?19??時(shí)間/天??圖2.每個(gè)時(shí)間點(diǎn)收集的緩釋液濃度,結(jié)果表示為X±S,n=3。??4.?ALP活性檢測(cè)??為了檢測(cè)所包載的rhBMP-2是否還具有成骨誘導(dǎo)活性,本實(shí)驗(yàn)將rhBMP-2的??緩釋液與hMSCs細(xì)胞共培養(yǎng)7天,結(jié)果表明緩釋?zhuān)程炫c緩釋?zhuān)诽焖占木忈屢??均能夠促進(jìn)hMSCs細(xì)胞堿性碟酸酶活性的増高(分別為0.?504?+?0.?06日和0.?684??±?0.060?U?mol?pNPP/min/mg?protein?),與對(duì)照組(0.?135?±?0.011?y?mol??pNPP/min/mg?protein)相比有盈著性差異(八0.05)。并且緩釋?zhuān)诽旖M謗導(dǎo)細(xì)胞??表達(dá)的ALP活性較緩釋?zhuān)程旖M高(代0.?05)。??討論??人骨形態(tài)形成蛋白屬于轉(zhuǎn)化成生長(zhǎng)因子-目(Transforming?growth?factor??g
本研究W膠原為媒介,將香草酸交聯(lián)的rhBMP-2殼聚糖微球粘附于多孔??矮基磯灰石支架的表面,使所制各的HCC支架能夠逐漸的緩釋?zhuān)颍瑁拢停校泊??進(jìn)骨組織長(zhǎng)入HA支架內(nèi)部,模式圖如圖1所示。??2.2.1?膠原徐層?HA?支架的蒂!J備(HA/Collagen?scaffold,?HC)??將I型牛膠原溶解于己酸(化05M)溶液中,待膠原充分洛解后,用氨氧??化鋼溶液將PH調(diào)節(jié)至中性,用MES緩沖液將膠原溶液濃度調(diào)節(jié)為O.lg/ml,??將高溫蒸汽滅菌的HA支架浸入膠原溶解中浸泡化。將溶解于MES水中的??EDC和NHS加入上述膠原溶液中使最終濃度為2.5?mg/ml?EDC和0.63?mg/ml??NHS對(duì)膠原進(jìn)行交聯(lián)[1氣然后將吸附有膠原溶液的支架取出,在室溫下真空??干燥24小時(shí),然后用PBS水輕柔的沖洗支架2次,在室溫下真空干燥24小??時(shí)后,于-20°低溫冷凍保存,W上均在無(wú)菌的條件下進(jìn)行。??2.2.2?膠原/rhBMP-2?殼聚糖微球支架的制備(HA/Collagen/RhBMP-2?chitosan??microsphere?scaffold?,?HCC)??本實(shí)驗(yàn)用滴加的方法將微球與膠原/HA支架復(fù)合
本文編號(hào):3054800
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