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恥垢分枝桿菌ligD和ku突變株的構建

發(fā)布時間:2017-07-13 19:16

  本文關鍵詞:恥垢分枝桿菌ligD和ku突變株的構建


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【摘要】:結核分枝桿菌(Mycobacterium tuberculosis, MTB)可引起結核病,是微生物中人類最大的敵人,據世界衛(wèi)生組織預測全球三分之一的人口感染了MTB, WHO的數據顯示,2011年全球新發(fā)現有870萬感染者患病,其中有110萬患者同時感染艾滋病毒,估計有140萬人死于結核病。因與艾滋病毒共同感染人體造成死亡的數目之巨,MTB已成為傳染病中的頭號殺手。雖然現已開發(fā)幾種抗結核類藥物但由于耐藥性的產生,這些藥物的控制效果遠遠達不到令人滿意的效果。結核病是一個從未解決的麻煩。 DNA雙鏈斷裂是普遍存在的一種DNA損傷,但其對于細胞來說是致命的。修復DNA雙鏈斷裂的途徑有同源重組(homologous recombination, HR)和非同源末端連接(non-homologous end-joining, NHEJ)。NHEJ最早是在哺乳動物細胞中發(fā)現的,并一直被認為只存在于真核生物中,其在真核生物中對保持基因組的穩(wěn)定性有很重要的作用。但之后的研究發(fā)現NHEJ也普遍存在于一些病原微生物中,且與耐藥和免疫逃避相關。 現已知NHEJ修復途徑涉及兩個蛋白LigD和Ku,同時對這兩個蛋白的功能也有了一定的了解,而在NHEJ修復過程中,LigD同Ku的作用機制及調控方式還不是很明確。本實驗室前期研究發(fā)現去乙酰化酶Sir2可能參與NHEJ修復途徑,還發(fā)現Ku的29位賴氨酸有乙;揎,這暗示了NHEJ修復的調控可能同Ku的K29乙酰化修飾有關。 我們以恥垢分枝桿菌做為模式生物使用無標記基因敲除法來構建ligD和ku兩個基因的不同突變體ligD ΔPolDom、TBku-his、ku-his、kuR29-his和kuQ29-his。無標記基因敲除需要兩個質粒,一個質粒為p1NIL,為目的基因提供多克隆位點,第二個質粒pGOAL,含有一個兩端為PacI酶切位點的標記基因盒。標記基因盒里有抗生素抗性基因、lacZ和sacB。構建成的自殺質粒含有pGOAL質粒的標記基因盒和修飾過的目的基因,最后經過兩次篩選得到我們所要的突變體。實驗結果發(fā)現同源臂的長度、堿處理質粒時堿的終濃度、沉淀DNA溶液的pH等條件和第二次篩選的擴增培養(yǎng)時間等都影響雙交換法突變株的構建。同時也發(fā)現M. smegmatis Ku的C端加His標簽不影響其參與的NHEJ活性,這為后面檢測恥垢分枝桿菌ku突變株(kuR29-his和kuQ29-his)的NHEJ活性時,消除His標簽引起NHEJ活性改變的影響。這些突變體為研究NHEJ修復的調控方式提供了重要的材料。
【關鍵詞】:恥垢分枝桿菌 非同源末端連接 Ku LigD 突變株
【學位授予單位】:華中農業(yè)大學
【學位級別】:碩士
【學位授予年份】:2013
【分類號】:R378.911
【目錄】:
  • 目錄4-7
  • 摘要7-8
  • Abstract8-10
  • 縮略語表10-11
  • 1 前言11-29
  • 1.1 結核分枝桿菌及其危害11-13
  • 1.1.1 結核分枝桿菌11-12
  • 1.1.2 結核分枝桿菌的危害12-13
  • 1.2 結核分枝桿菌中的DNA修復13-15
  • 1.3 真核生物的NHEJ15-18
  • 1.3.1 真核中蛋白組成和互作16
  • 1.3.2 真核NHEJ修復機制16-18
  • 1.4 原核生物的NHEJ18-22
  • 1.4.1 Ku蛋白19-20
  • 1.4.2 LigD蛋白20-22
  • 1.4.2.1 POL結構域21
  • 1.4.2.2 LIG結構域21
  • 1.4.2.3 PE結構域21-22
  • 1.5 結核分枝桿菌中的NHEJ22-25
  • 1.6 蛋白質的乙;揎25
  • 1.7 基因敲除原理25-28
  • 1.8 研究目的與意義28-29
  • 2 材料和方法29-43
  • 2.1 材料29-33
  • 2.1.1 質粒與菌株29-30
  • 2.1.2 培養(yǎng)基30
  • 2.1.3 主要試劑30
  • 2.1.4 主要溶液30-32
  • 2.1.5 主要實驗儀器32-33
  • 2.2 方法33-43
  • 2.2.1 目的片斷的克隆33-36
  • 2.2.1.1 構建pZY73質粒的目的基因片段33-34
  • 2.2.1.2 構建pZY75質粒的目的基因片段34-35
  • 2.2.1.3 構建pZY91質粒的目的基因片段35-36
  • 2.2.2 電轉質粒的構建36-38
  • 2.2.2.1 p1NIL與pGOAL質粒的制備36-37
  • 2.2.2.2 p1NIL質粒的酶切37
  • 2.2.2.3 目的片段與酶切后的p1NIL連接37
  • 2.2.2.4 p1NIL-目的片段重組質粒的轉化37-38
  • 2.2.2.5 PacⅠ酶切重組質粒與pGOAL質粒38
  • 2.2.2.6 pGOAL質粒與p1NIL-target gene的連接38
  • 2.2.2.7 電轉質粒載體的轉化38
  • 2.2.3 基因敲除38-40
  • 2.2.3.1 感受態(tài)的制備38-39
  • 2.2.3.2 質粒的預處理39
  • 2.2.3.3 電轉39-40
  • 2.2.3.4 第二次篩選40
  • 2.2.4 突變體陽性檢測40-43
  • 2.2.4.1 PCR驗證第二次篩選40
  • 2.2.4.2 Western Blot驗證40-41
  • 2.2.4.3 M.smegmatis ku-his菌株中的Ku-His蛋白純化41-42
  • 2.2.4.4 SDS-PAGE分析蛋白純度和分子量42
  • 2.2.4.5 NHEJ效率檢測42-43
  • 3 結果與分析43-51
  • 3.1 目的片段的構建43-44
  • 3.1.1 pZY73質粒的目的基因片段43
  • 3.1.2 pZY75質粒的目的基因片段43-44
  • 3.1.3 pZY91質粒的目的基因片段44
  • 3.2 p1NIL與pGOAL質粒的酶切44-45
  • 3.3 pZY73、pZY75與pZY91質粒酶切驗證45-46
  • 3.4 堿處理的條件46-47
  • 3.5 第二次篩選47
  • 3.6 第二次篩選后菌落PCR驗證47-48
  • 3.7 第二次篩選后菌落Western Blot驗證48-49
  • 3.8 M smegmatis mc~2 155 ku-his菌株的Ku-His蛋白的大量純化49
  • 3.9 NHEJ修復效率檢測49-51
  • 4 討論51-53
  • 參考文獻53-58
  • 致謝58

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