【摘要】:骨髓中的間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells, MSCs)在不同的誘導條件下,具有向中胚層和神經(jīng)外胚層組織細胞分化的能力,已成為組織工程的種子細胞。目前,許多文獻報道了關(guān)于MSCs的分離、鑒定、生物學性狀及定向誘導分化.。隨著組織細胞工程學和基因工程學的發(fā)展,利用MSCs的多向分化潛能,在組織工程、基因治療以及器官移植等方面的應(yīng)用研究已成為研究熱點。然而MSCs在血管組織工程中的作用及其與血管內(nèi)皮細胞之間的關(guān)系的研究尚少。 MSCs具有內(nèi)皮細胞的某些表型,因此研究和分析MSCs生長、發(fā)育、分化和表型特征,不僅對研究血管內(nèi)皮細胞相關(guān)疾病的治療有著重要的指導意義,而且給血管組織工程學帶來了一次革命性轉(zhuǎn)變。MSCs作為血管組織工程的種子細胞,具有其他細胞所不可比擬的優(yōu)越性:①取材方便,損傷輕微,不必通過手術(shù)從病人身上得到自身成熟細胞,避免對病人造成不必要的二次創(chuàng)傷;②從患者本人骨髓血培養(yǎng)擴增的MSCs誘導為血管內(nèi)皮細胞,不存在組織相容性問題;③體內(nèi)成熟內(nèi)皮細胞其分裂增殖能力有限,且還存在去分化形成腫瘤的傾向。MSCs具有旺盛的增殖分化潛能,無誘導劑情況下可保持25代內(nèi)無分化趨勢,并且MSCs在體內(nèi)具有免疫調(diào)節(jié)作用,至今未 WP=112 見體內(nèi)發(fā)生腫瘤的報導;④人工合成材料的可降解性材料聚乙二醇酸PGA、聚丙醇酸PLA、聚乙醇酸PLLA,與MSCs相結(jié)合使用,將會給血管組織工程學帶來不可估量的使用前景。殖分化潛能,無誘導劑情況下,可保持25代內(nèi)無分化趨勢。 細胞分化程序的啟動和進行是多個基因有次序的開啟/關(guān)閉或表達增強/降低的結(jié)果,受細胞與細胞(包括間質(zhì)細胞如成纖維細胞、肥大細胞等)、細胞與細胞外基質(zhì)間相互作用的影響。細胞因子在傳遞細胞與胞外基質(zhì)之間、細胞與細胞之間的信息中起重要作用。 Flt-1/VEGF,F(xiàn)lk-1/VEGF系統(tǒng)在內(nèi)皮細胞增殖分化、內(nèi)皮細胞游走及管腔形成過程中起重要作用并且大量實驗表明VEGF在內(nèi)皮細胞誘導分化過程中起著關(guān)鍵的作用。細胞外基質(zhì)成分的改變也影響干細胞的分化,胞外某些信息通過細胞外基質(zhì)傳遞給干細胞,以觸發(fā)跨膜信號傳導,調(diào)控細胞的基因表達。這一過程不僅改變干細胞的分裂方式,而且也激活干細胞的多潛能性,使干細胞產(chǎn)生一種或多種定向祖細胞,以適應(yīng)組織修復的需要。 本研究擬通過免疫熒光、全細胞膜片鉗技術(shù)、激光共聚焦顯微鏡實時監(jiān)控技術(shù)及三維圖象重組技術(shù)、Bodyen 小室技術(shù)、體外血管形成實驗,從形態(tài)學、電生理等多角度逐漸深入地研究VEGF在MSCs內(nèi)皮細胞誘導分化過程中所起的作用;并利用抑制性消減雜交技術(shù)從分子水平上尋找內(nèi)皮細胞分化的機理,探討MSCs 作為血管組織工程種子細胞的可能性。 結(jié)果: 1.本實驗在貼壁篩選與密度梯度離心法相結(jié)合的基礎(chǔ)上,傳代過程中與篩網(wǎng)過濾法結(jié)合,除去少量已分化或老化的體積較大而扁平的細胞(mMSCs),使細胞純度達95%,平均為93.26±2.48%。與以往部分研究不同,CD29陰性,CD44陽性率達95%,說明分離的細胞群純度較高。 WP=113 2.MSCs的細胞生物學特征及電生理特征研究甚少。本實驗發(fā)現(xiàn),MSCs中S+G2 期的細胞約占18%,而G1期的細胞為 82 % (即靜止期細胞 ) ,只有少數(shù)細胞處于活躍的增殖期。在對原代、凍存后復蘇及傳代培養(yǎng)至P12的MSCs的染色體核型分析中發(fā)現(xiàn)其保持穩(wěn)定的二倍體核型且核型正常,因此,從細胞生物學角度進一步證實MSCs有望成為穩(wěn)定培養(yǎng)的細胞系,作為細胞治療的種子細胞。 3.MSCs細胞上存在電壓依賴型鈣通道(VOCCs)。其峰值電流(ICa-Peak)在+30 - +40mV為(97.83±8.98,pA,n=8),此電流可被10uM的Nicardipine阻斷從而證實為細胞的鈣通道電流。 4.MSCs具備內(nèi)皮分化的細胞免疫學基礎(chǔ)。表達早期內(nèi)皮細胞分化標志和EPC(內(nèi)皮前體細胞)標志之一Flk-1,表達Flt-1,與早期內(nèi)皮細胞發(fā)育有關(guān)。 5.全細胞膜片鉗技術(shù)觀察VEGF作用下MSCs細胞內(nèi)Ca2+ 峰值電流升高,(實驗組與對照組分別為110.00±7.62、97.50±7.01 (p0.05),pA,n=9)。與對照組相比VEGF組有統(tǒng)計學意義(P0.05),說明MSCs能接受VEGF刺激,引起胞內(nèi)鈣離子濃度發(fā)生相應(yīng)變化。 6.給予VEGF165刺激,細胞內(nèi)Ca2+開始上升,經(jīng)12秒趨于平穩(wěn),持續(xù)10秒后達到高峰,后開始下降,VEGF使細胞內(nèi)Ca2+波動后維持在比加藥前稍高的細胞內(nèi)Ca2+水平上(P0.001),提示VEGF作用于MSCs后,細胞內(nèi)Ca2+經(jīng)各種信號分子調(diào)節(jié)而波動后,細胞可重新建立新的鈣平衡,即在無細胞鈣毒性前提下提高了細胞內(nèi)靜息鈣水平,而這種變化對于MSCs分化具有重要意義。 7.利用LSCM實時動態(tài)監(jiān)測了MSCs在Matrigel/VEGF和Matrigel/內(nèi)皮細胞條件誘導液構(gòu)成的內(nèi)皮細胞生長微環(huán)境中的運動遷移情況,發(fā)現(xiàn)內(nèi)皮細胞條件誘導液促進MSCs的遷移,在Matrigel內(nèi)遷移的深度及遷移至聚碳酸脂 WP=114 膜下的細胞均明顯多于對照組(p〈0.05),而VEGF組遷移的深度雖高于對照組(p〈0.05),但遷移至聚碳酸脂膜下的細胞與對照組相比,并無統(tǒng)計學意義(p〉0.05),說明MSCs在細胞外基質(zhì)的微環(huán)境遷移過程中,VEGF確實發(fā)揮一定作用,但還需其它各種復雜成分的協(xié)同參與。 8.VEGF組能夠形成管腔樣結(jié)構(gòu),內(nèi)皮細胞條件培養(yǎng)液組形成管腔樣
【學位授予單位】:吉林大學
【學位級別】:博士
【學位授予年份】:2004
【分類號】:R329
【圖文】:
35圖 1 SSH 實驗流程圖基本過程種不同細胞(tester 和 driver)的 mRNA,反轉(zhuǎn)錄成 c切,以產(chǎn)生大小適當?shù)钠筋^末端 cDNA 片段。

圖 2: MSCs P0、P6、P12生長曲線4.細胞周期:流式細胞儀結(jié)果示 MSCs 中 S+G2的細胞為 82 % (即靜止期細胞 ) ,只有少數(shù)細胞圖 3:MSCs 細胞增殖周期
【參考文獻】
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本文編號:
2720638
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