發(fā)布時(shí)間：2018-03-11 03:32

  本文選題：骨髓基質(zhì)干細(xì)胞　切入點(diǎn)：內(nèi)皮細(xì)胞　出處：《山東大學(xué)》2009年碩士論文　論文類型：學(xué)位論文

【摘要】： 目的: 自兔骨髓中分離獲取高純度的骨髓基質(zhì)干細(xì)胞(Bone Marrow Stromal Cells,BMSC)并對(duì)其進(jìn)行體外培養(yǎng)、擴(kuò)增;將部分BMSC向內(nèi)皮細(xì)胞(Endothelial Cells,EC)誘導(dǎo),并鑒別其表型;觀察低氧條件下BMSC及其來(lái)源的EC聯(lián)合培養(yǎng)后,BMSC的增殖情況及體外成骨能力,探討低氧條件下BMSC與其來(lái)源的EC聯(lián)合培養(yǎng)對(duì)其體外成骨能力的影響。 方法: 1.兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞(BMSC)的分離、培養(yǎng) 利用Percoll分離液(相對(duì)密度1.077)進(jìn)行密度梯度離心法從兔骨髓中分離骨髓基質(zhì)干細(xì)胞,進(jìn)行體外培養(yǎng)擴(kuò)增。 2.骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向內(nèi)皮細(xì)胞的誘導(dǎo)分化、培養(yǎng)和鑒定 采用細(xì)胞性狀穩(wěn)定的第二代骨髓基質(zhì)干細(xì)胞消化,吹打均勻,更換培養(yǎng)液為內(nèi)皮誘導(dǎo)培養(yǎng)液,兩三天換液持續(xù)誘導(dǎo),消化傳代后,取細(xì)胞做CD34免疫細(xì)胞化學(xué)鑒定其內(nèi)皮細(xì)胞表型。 3.MTT法檢測(cè)低氧條件下BMSC與其誘導(dǎo)來(lái)源的EC聯(lián)合培養(yǎng)的細(xì)胞增殖及活力 取第二代骨髓基質(zhì)干細(xì)胞與其誘導(dǎo)來(lái)源的內(nèi)皮細(xì)胞,實(shí)驗(yàn)分四組:(1)BMSC常氧培養(yǎng)組;(2)BMSC低氧培養(yǎng)組;(3)BMSC+EC常氧聯(lián)合培養(yǎng)組;(4)BMSC+EC低氧聯(lián)合培養(yǎng)組。體外連續(xù)培養(yǎng)7天,分別在此7天內(nèi)用MTT法檢測(cè)各組細(xì)胞的增殖能力,酶標(biāo)儀測(cè)定光密度值(OD值),每個(gè)樣本設(shè)六個(gè)復(fù)孔,求其平均值并繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線。 4.檢測(cè)低氧條件下BMSC與其誘導(dǎo)來(lái)源的EC聯(lián)合培養(yǎng)的成骨能力 取第三代骨髓基質(zhì)干細(xì)胞與其誘導(dǎo)來(lái)源的內(nèi)皮細(xì)胞,實(shí)驗(yàn)分四組:(1)BMSC常氧成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)組;(2)BMSC低氧成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)組;(3)BMSC+EC常氧成骨誘導(dǎo)聯(lián)合培養(yǎng)組;(4)BMSC+EC低氧成骨誘導(dǎo)聯(lián)合培養(yǎng)組。96孔板內(nèi)體外連續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng)6天,分別在此6天內(nèi)用PNPP法檢測(cè)各組細(xì)胞的堿性磷酸酶(ALP)活性的表達(dá),酶標(biāo)儀測(cè)定光密度值(OD值),每個(gè)樣本設(shè)五個(gè)復(fù)孔,求其平均值,并繪制ALP活性增長(zhǎng)曲線;6孔板內(nèi)四組樣本體外連續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng)7天,在第7天行茜素紅染色,觀察礦化結(jié)節(jié)形成情況。 結(jié)果: 1.密度梯度離心結(jié)合貼壁獲取高純度的BMSC,且較好保持了細(xì)胞的活性,貼壁3天后細(xì)胞成長(zhǎng)梭形及多角形,五六天后增殖迅速,形成細(xì)胞集落。傳代后細(xì)胞形態(tài)更加單一,五六天后即可鋪滿瓶底。 2.由BMSC誘導(dǎo)來(lái)源的原代EC培養(yǎng)三天后,細(xì)胞貼壁,五天后明顯集落形成,細(xì)胞成梭形;傳代后,細(xì)胞逐漸變大,由長(zhǎng)梭形變?yōu)槎嘟切?成典型的“鋪路石”樣內(nèi)皮細(xì)胞形態(tài)。傳代后的內(nèi)皮細(xì)胞CD34免疫細(xì)胞化學(xué)染色為陽(yáng)性。 3.MTT法檢測(cè)各組細(xì)胞增殖及活力顯示:第一、二天各組細(xì)胞數(shù)量無(wú)明顯增加且統(tǒng)計(jì)學(xué)上各組間細(xì)胞增殖能力沒(méi)有顯著性差異(P＞0.05);第三天后,各組細(xì)胞數(shù)量顯著增加,統(tǒng)計(jì)學(xué)上低氧培養(yǎng)組的細(xì)胞增殖能力均明顯高于常氧培養(yǎng)組(P＜0.01),但同條件下的BMSC單獨(dú)培養(yǎng)組和BMSC+EC聯(lián)合培養(yǎng)組間的細(xì)胞增殖能力沒(méi)有顯著性差異(P＞0.05)。 4.PNPP法檢測(cè)各組ALP活性表達(dá)顯示:BMSC+EC低氧成骨誘導(dǎo)聯(lián)合培養(yǎng)組的ALP活性表達(dá)明顯高于其他三組(P＜0.05);BMSC低氧成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)組高于BMSC常氧成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)組(P＜0.05);BMSC+EC常氧成骨誘導(dǎo)聯(lián)合培養(yǎng)組高于BMSC常氧成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)組(P＜0.05);四組樣本培養(yǎng)七天后,BMSC+EC低氧成骨誘導(dǎo)聯(lián)合培養(yǎng)組部分細(xì)胞密集生長(zhǎng)區(qū)有礦化結(jié)節(jié)形成,茜素紅染色呈橘紅色,其他三組未見(jiàn)。 結(jié)論: 1.BMSC可通過(guò)密度梯度離心結(jié)合貼壁培養(yǎng)獲得。在一定的體外培養(yǎng)條件下,特性穩(wěn)定,增殖迅速。BMSC在一定條件下可以誘導(dǎo)分化為內(nèi)皮細(xì)胞。 2.在一定時(shí)間內(nèi),低氧培養(yǎng)可以促進(jìn)BMSC的增殖;BMSC來(lái)源的EC不能促進(jìn)BMSC的增殖。 3.在一定時(shí)間內(nèi),低氧培養(yǎng)可增強(qiáng)BMSC的成骨活性;由BMSC來(lái)源的EC能夠增強(qiáng)BMSC的成骨活性;低氧條件下,BMSC、EC聯(lián)合培養(yǎng),BMSC的成骨活性可顯著提高。
[Abstract]:Objective:
Since obtaining high purity of isolated rabbit bone marrow stromal stem cells in bone marrow (Bone Marrow Stromal Cells, BMSC) and its in vitro amplification; part of BMSC to endothelial cells (Endothelial Cells EC) induction, and identify the phenotype; the effects of BMSC and its source under hypoxic conditions EC co culture, proliferation and in vitro BMSC osteogenic ability of BMSC under hypoxic conditions and source of EC combined effect of culture on the capacity of osteogenesis in vitro.
Method:
1. isolation and culture of bone marrow stromal cells (BMSC) in rabbits
The density gradient centrifugation was used to separate bone marrow stromal stem cells from rabbit bone marrow by using Percoll separation solution (relative density 1.077).
Induction and differentiation of 2. bone marrow stromal cells to endothelial cells, culture and identification
The second generation of bone marrow stromal cells were stable stem cell digestion, army uniform, the replacement for the endothelial inducing medium cultured for two or three days for liquid continuous induction, after digestion and passage, the cells do CD34 immunocytochemical identification of the phenotype of endothelial cells.
3.MTT assay was used to detect the proliferation and activity of BMSC and its induced EC in hypoxic conditions
The second generation of bone marrow stromal stem cells and induced endothelial cells were divided into four groups: (1) BMSC normoxia group; (2) BMSC hypoxia group; (3) group co cultured in normoxia BMSC+EC group; (4) BMSC+EC co cultured hypoxia. In vitro cultured continuously for 7 days, respectively, in the 7 days was measured by MTT cell proliferation, determination of optical density (OD) eliasa, each sample set up six wells, calculate the average value and drawing the cell growth curve.
4. detection of osteogenesis ability of BMSC and its induced EC under hypoxic condition
The third generation of bone marrow stromal stem cells and induced endothelial cells were divided into four groups: (1) BMSC normoxic osteoblast induced group; (2) BMSC hypoxia induced osteoblast group; (3) BMSC+EC normoxia and osteogenesis co culture group; (4) BMSC+EC hypoxia induced bone lead combined culture group.96 orifice in vitro cultured for 6 days, 6 days respectively in alkaline phosphatase was measured by PNPP cell (ALP) activity expression, determination of optical density (OD) eliasa, each sample set up five wells, calculate the average value, and draw the growth activity of ALP curve; in 6 pore plate four samples of in vitro cultured for 7 days in seventh days, alizarin red staining, observe the formation of mineralized nodules.
Result:
1. density gradient centrifugation combined with adherence to obtain high purity BMSC, and maintained cell viability. After 3 days, cell growth was spindle shaped and polygonal. After five or six days, cell proliferation was rapid, and colony formation was formed. After passages, cell morphology was more single, and five or six days later, it was able to fill the bottom of the bottle.
2. induced by BMSC derived from primary EC after three days of culture, adherent cells, significantly five days after colony formation, spindle cells; after passage, the cells gradually become larger, from fusiform to polygon, a typical cobblestone morphology of endothelial cells. Endothelial cells CD34 immunocytochemistry after passage of the staining was positive.
The proliferation and 3.MTT activity assay showed that the number of first, second days the cells were not significantly increased and statistically between groups of cell proliferation had no significant difference (P > 0.05); third days later, the number of cells in each group increased significantly, statistically hypoxia group cell proliferation were significantly higher than those in normoxia group (P < 0.01), but under the same conditions of BMSC alone to cultivate the ability of joint training group and the proliferation of BMSC+EC cells between groups had no significant difference (P > 0.05).
To detect the activity of ALP 4.PNPP showed that BMSC+EC expression of hypoxia osteogenesis co cultured group ALP activity was significantly higher than the other three groups (P < 0.05); BMSC hypoxia induced osteoblast BMSC group was higher than that of normoxic osteoblast induced group (P < 0.05); normoxia BMSC+EC osteogenic induction group was higher than that of joint training BMSC normoxic osteoblast induced group (P < 0.05); four samples after seven days of culture, BMSC+EC hypoxia osteogenesis cells co culture group dense growth zone mineralized nodule formation, alizarin red staining is orange red, the other three groups were not found.
Conclusion:
1.BMSC can be obtained through density gradient centrifugation combined with adherent culture. Under certain culture conditions,.BMSC is stable and proliferated rapidly. Under certain conditions, it can be induced to differentiate into endothelial cells.
2. during a certain period of time, hypoxia culture can promote the proliferation of BMSC, and the EC derived from BMSC can not promote the proliferation of BMSC.
3., in a certain period of time, hypoxic culture can enhance the osteogenic activity of BMSC. The EC derived from BMSC can enhance the osteogenic activity of BMSC. Under hypoxia, BMSC and EC co culture can significantly enhance the osteogenic activity of BMSC.

【學(xué)位授予單位】：山東大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】：碩士
【學(xué)位授予年份】：2009
【分類號(hào)】：R329

【相似文獻(xiàn)】

中國(guó)期刊全文數(shù)據(jù)庫(kù) 前10條

1 張超;曲偉棟;趙華強(qiáng);;低氧狀態(tài)下聯(lián)合培養(yǎng)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞及其誘導(dǎo)來(lái)源的內(nèi)皮細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)研究[J];組織工程與重建外科雜志;2010年06期

2 孫源;林紅;吳子征;陳瑜;董健;;聯(lián)合培養(yǎng)時(shí)誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞對(duì)自體骨髓基質(zhì)干細(xì)胞成骨作用的影響[J];中華創(chuàng)傷骨科雜志;2006年10期

3 王腳茍;關(guān)瑞錦;;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞與心臟疾病[J];心血管病學(xué)進(jìn)展;2007年04期

4 陶圣祥;余國(guó)榮;喻愛(ài)喜;鄭曉暉;鄧凱;;負(fù)壓培養(yǎng)對(duì)大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖及分化的影響[J];醫(yī)學(xué)新知雜志;2007年06期

5 劉春明;付國(guó)偉;文冰;舒禮良;趙文增;;人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞構(gòu)建組織工程心臟瓣膜的研究[J];山東醫(yī)藥;2008年13期

6 黃盛東;劉曉紅;白辰光;龔德軍;袁揚(yáng);劉延玲;徐志云;;肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子對(duì)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞與纖維連接蛋白涂層黏附行為的影響[J];中華實(shí)驗(yàn)外科雜志;2006年02期

7 張鳳香,李樹(shù)青;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞移植治療缺血性心臟病的研究進(jìn)展[J];心血管病學(xué)進(jìn)展;2005年06期

8 李春暉;焦保華;康春生;王廣秀;劉曉智;;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)、鑒定及標(biāo)記的初步研究[J];細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志;2006年05期

9 李東;馬魯新;馬玲;蔡景龍;劉偉;崔磊;曹誼林;胡振生;;人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞體外三維立體培養(yǎng)的實(shí)驗(yàn)研究[J];山東大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版);2006年09期

10 楊興華;張僚;陳岱運(yùn);韓曉艷;高志強(qiáng);;兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的培養(yǎng)及成骨誘導(dǎo)研究[J];泰山醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào);2008年12期

中國(guó)重要會(huì)議論文全文數(shù)據(jù)庫(kù) 前10條

1 吳一民;呂惠成;佟雁翔;賈鵬;張清林;;兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞體外培養(yǎng)的生物學(xué)特性[A];第七屆全國(guó)創(chuàng)傷學(xué)術(shù)會(huì)議暨2009海峽兩岸創(chuàng)傷醫(yī)學(xué)論壇論文匯編[C];2009年

2 童培建;何幫劍;金紅婷;趙紅昌;沈彥;肖魯偉;馬鎮(zhèn)川;;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在骨內(nèi)的示蹤方法研究[A];2008年浙江省骨科學(xué)學(xué)術(shù)年會(huì)論文匯編[C];2008年

3 張蒙夏;謝富康;;成年SD鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向神經(jīng)元樣細(xì)胞分化過(guò)程中分化與凋亡關(guān)系的研究[A];解剖學(xué)雜志——中國(guó)解剖學(xué)會(huì)2002年年會(huì)文摘匯編[C];2002年

4 殷曉雪;周方;張志山;;間斷應(yīng)用甲狀旁腺激素(PTH1-34)對(duì)人骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的影響[A];第七屆全國(guó)創(chuàng)傷學(xué)術(shù)會(huì)議暨2009海峽兩岸創(chuàng)傷醫(yī)學(xué)論壇論文匯編[C];2009年

5 林巍巍;陳雪;李奕;王曉冬;;施萬(wàn)細(xì)胞對(duì)大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向神經(jīng)組織細(xì)胞分化誘導(dǎo)的初步研究[A];中國(guó)解剖學(xué)會(huì)第十一屆全國(guó)組織學(xué)與胚胎學(xué)青年學(xué)術(shù)研討會(huì)論文匯編[C];2009年

6 劉衛(wèi)平;費(fèi)舟;章翔;玉石;伊西才;高大寬;林偉;李俠;魏禮州;;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞移植治療植物人一例報(bào)道[A];中華醫(yī)學(xué)會(huì)神經(jīng)外科學(xué)分會(huì)第九次學(xué)術(shù)會(huì)議論文匯編[C];2010年

7 季正劍;許小媛;楊麗華;邢華;;大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的分離與培養(yǎng)[A];全國(guó)動(dòng)物生理生化第十一次學(xué)術(shù)交流會(huì)論文摘要匯編[C];2010年

8 孫曉寧;趙強(qiáng);徐得民;陳安清;翟萬(wàn)銀;常江;;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞構(gòu)建組織工程心臟瓣膜的可行性研究[A];全國(guó)心臟瓣膜外科學(xué)術(shù)會(huì)議論文集[C];2005年

9 孫曉寧;趙強(qiáng);徐得民;陳安清;翟萬(wàn)銀;常江;;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞構(gòu)建組織工程心臟瓣膜的可行性研究[A];第八屆華東六省一市胸心血管外科學(xué)術(shù)會(huì)議論文匯編[C];2005年

10 孫立;田曉濱;韓偉;胡如印;高飛;;pIRES-BMP2質(zhì)粒轉(zhuǎn)染大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞后的持續(xù)表達(dá)情況[A];2010年貴州省顯微外科年會(huì)暨貴陽(yáng)顯微外科中心揭牌儀式論文匯編[C];2010年

中國(guó)重要報(bào)紙全文數(shù)據(jù)庫(kù) 前10條

1 ;地塞米松對(duì)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞生物學(xué)特性的影響[N];中國(guó)醫(yī)藥報(bào);2003年

2 祝天澤;曹誼林“再造顱骨”轟動(dòng)世界[N];大眾科技報(bào);2004年

3 吳一福;西京醫(yī)院振蕩法支架種植內(nèi)皮細(xì)胞獲成功[N];中國(guó)醫(yī)藥報(bào);2008年

4 ;中藥抗血栓機(jī)理及對(duì)內(nèi)皮細(xì)胞的生物醫(yī)學(xué)研究取得佳績(jī)[N];科技日?qǐng)?bào);2000年

5 趙軍;耳毒性藥物對(duì)耳蝸螺旋動(dòng)脈平滑肌和內(nèi)皮細(xì)胞電生理特性的影響項(xiàng)目[N];科技日?qǐng)?bào);2007年

6 吳一福;PTFE血管材料可攜載VEGF基因轉(zhuǎn)染[N];中國(guó)醫(yī)藥報(bào);2006年

7 楊茜;美學(xué)者發(fā)現(xiàn)抗癌藥新生物指標(biāo)[N];中國(guó)醫(yī)藥報(bào);2006年

8 ;應(yīng)用珊瑚及骨髓基質(zhì)干細(xì)胞復(fù)合物修復(fù)股骨缺損的實(shí)驗(yàn)研究[N];中國(guó)醫(yī)藥報(bào);2003年

9 衣曉峰 李媛媛;化療可以有另一種方式[N];健康報(bào);2006年

10 紀(jì)英超;Tumsatatin使腫瘤細(xì)胞糧盡援絕[N];醫(yī)藥經(jīng)濟(jì)報(bào);2002年

中國(guó)博士學(xué)位論文全文數(shù)據(jù)庫(kù) 前10條

1 蔣軍健;大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞體內(nèi)外表達(dá)神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子與體內(nèi)移植延緩失神經(jīng)骨骼肌萎縮及其機(jī)制的實(shí)驗(yàn)研究[D];復(fù)旦大學(xué);2010年

2 張暉;bFGF/PLGA緩釋微球?qū)ν孟リP(guān)節(jié)軟骨不同面積缺損修復(fù)的實(shí)驗(yàn)研究[D];四川大學(xué);2005年

3 郜元軍;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向腸神經(jīng)元細(xì)胞分化的研究[D];華中科技大學(xué);2006年

4 袁紹輝;重組BMP-4/7融合基因及其表達(dá)蛋白對(duì)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞生物學(xué)行為的影響[D];吉林大學(xué);2005年

5 戚超;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞與生物衍生骨復(fù)合修復(fù)山羊脛骨缺損的實(shí)驗(yàn)研究[D];四川大學(xué);2005年

6 馬東洋;基于骨髓基質(zhì)干細(xì)胞構(gòu)建無(wú)外支架組織工程骨的實(shí)驗(yàn)研究[D];第四軍醫(yī)大學(xué);2010年

7 陳紅霞;大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的分離培養(yǎng)、誘導(dǎo)分化和自體移植治療心肌梗死的實(shí)驗(yàn)研究[D];山東大學(xué);2004年

8 肖萬(wàn)軍;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞復(fù)合幾丁質(zhì)凝膠體外聯(lián)合培養(yǎng)的實(shí)驗(yàn)研究[D];中國(guó)醫(yī)科大學(xué);2006年

9 張洪濤;PRP誘導(dǎo)人BMSc體內(nèi)成骨及免疫配型不相合人BMSc混合培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)研究[D];第一軍醫(yī)大學(xué);2006年

10 張?jiān)隼?骨髓來(lái)源的非粘附基質(zhì)干細(xì)胞在造血重建和遺傳缺陷糾正中的作用[D];蘇州大學(xué);2005年

中國(guó)碩士學(xué)位論文全文數(shù)據(jù)庫(kù) 前10條

1 曲偉棟;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞與自體骨髓基質(zhì)干細(xì)胞低氧條件下聯(lián)合培養(yǎng)后的成骨能力特性[D];山東大學(xué);2009年

2 唐經(jīng)勵(lì);SiRNA干擾技術(shù)穩(wěn)定下調(diào)基因osterix在骨髓基質(zhì)干細(xì)胞中的表達(dá)[D];浙江大學(xué);2011年

3 王濤;BMP2和VEGF基因共修飾的骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在低氧條件下成骨能力研究[D];山東大學(xué);2010年

4 孫禹;移植的骨髓基質(zhì)干細(xì)胞在兔腰椎間盤(pán)內(nèi)分化的研究[D];中國(guó)醫(yī)科大學(xué);2006年

5 高錦;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞移植修復(fù)椎間盤(pán)退變的實(shí)驗(yàn)研究[D];中國(guó)醫(yī)科大學(xué);2007年

6 潘鋒;兔BMSCs體外培養(yǎng)及其向成骨細(xì)胞分化的實(shí)驗(yàn)研究[D];中國(guó)醫(yī)科大學(xué);2005年

7 馮勇;成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子-4在骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向韌帶和肌腱細(xì)胞的分化過(guò)程中作用的實(shí)驗(yàn)研究[D];華中科技大學(xué);2007年

8 李府;茶黃素對(duì)兔骨髓基質(zhì)干細(xì)胞向脂肪細(xì)胞誘導(dǎo)分化的影響[D];安徽醫(yī)科大學(xué);2008年

9 李麗瓊;心肌細(xì)胞共培養(yǎng)誘導(dǎo)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞分化為心肌細(xì)胞的研究[D];華中科技大學(xué);2007年

10 張建富;骨髓源神經(jīng)干細(xì)胞對(duì)神經(jīng)膠質(zhì)瘤趨化性的研究[D];青島大學(xué);2008年

，

本文編號(hào)：1596410