首先本文以早熟京茄1號、京茄218、京茄黑龍王、黑霸、三亞5號和1112×407六個不同品種茄子種子為試驗材料,研究了TTC染色液濃度、染色溫度和染色時間對茄子種子生活力測定的差異,摸索出TTC染色法測定茄子種子生活力的最佳條件[1],以期為茄子種子生產(chǎn)和銷售提供參考依據(jù),為茄子種子生活力TTC測定法早日列入我國《農(nóng)作物種子檢驗規(guī)程》和《國際種子檢驗規(guī)程》奠定基礎[1]。其次為探究種子在萌發(fā)過程中打破休眠的影響因子,本文特以成都好特園藝有限公司2014年生產(chǎn)的托魯巴姆（Solanum torvum Swartz）種子為研究材料,該種子未經(jīng)破休眠處理具有極強的休眠特性。在已有的研究基礎上進行總結分析,采用多種方法試圖打破其休眠,以便獲得適宜的打破托魯巴姆種子休眠的方法應用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)。同時為了進一步探究種子在解除休眠過程中與細胞壁降解相關的酶活性變化之間的關系,對托魯巴姆種子休眠解除過程中β-甘露聚糖酶、β-甘露糖苷酶和α-半乳糖苷酶活性的變化進行了研究。研究結果如下:1.浸種溫度20℃、浸種時間18h、染色液濃度1%、染色溫度35℃、染色時間18h,為TTC法快速測定茄子種子生活力的適宜... 

【文章頁數(shù)】：62 頁

【學位級別】：碩士

【文章目錄】：
摘要
Abstract
縮略詞表
第一章 前言
    1 種子休眠的研究現(xiàn)狀
        1.1 引起種子休眠的原因
            1.1.1 種皮結構特性導致的休眠
            1.1.2 種子中存在萌發(fā)抑制物質(zhì)導致的休眠
            1.1.3 種胚未發(fā)育完全或未成熟導致的休眠
        1.2 種子休眠的分類
            1.2.1 根據(jù)休眠出現(xiàn)的原因分類
            1.2.2 根據(jù)休眠出現(xiàn)的形式分類
        1.3 種子休眠的機理
            1.3.1 內(nèi)源激素調(diào)控機理
            1.3.2 代謝物質(zhì)調(diào)控機理
            1.3.3 細胞膜調(diào)控機理
            1.3.4 光敏素調(diào)控機理
            1.3.5 基因表達調(diào)控機理
        1.4 解除種子休眠的方法
            1.4.1 物理方法
            1.4.2 化學方法
            1.4.3 綜合方法
    2 判斷種子休眠的方法
    3 茄子種子生活力的研究現(xiàn)狀
    4 托魯巴姆種子促萌技術研究進展
第二章 TTC法測定茄子種子生活力的適宜條件研究
    1 試驗材料
        1.1 種子材料
        1.2 試驗儀器和藥品
    2 試驗方法
        2.1 發(fā)芽試驗
        2.2 TTC溶液的配制
            2.2.1 磷酸緩沖液的配制
            2.2.2 不同濃度TTC溶液配制
        2.3 種子浸泡、染色
        2.4 著色種子縱切，顯微鏡下觀察
    3 結果與分析
        3.1 統(tǒng)計發(fā)芽率
        3.2 TTC染色法不同品種茄子種子著色情況
        3.3 著色種子縱切、顯微鏡下觀察種子切面染色情況
        3.4 確定TTC測定茄子種子生活力的鑒定原則
    4 結論與討論
第三章 托魯巴姆種子休眠和萌發(fā)的研究
    1 試驗材料
    2 試驗方法
        2.1 種子千粒重測定
        2.2 種子生活力測定
        2.3 溫度對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
        2.4 光照周期對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
        2.5 植物激素對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
        2.6 化學試劑對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
        2.7 層積和后熟對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
        2.8 β-甘露聚糖酶、β-甘露糖苷酶和α-半乳糖苷酶活性的測定
            2.8.1 種子處理
            2.8.2 粗酶液的提取
            2.8.3 酶活性的測定
                2.8.3.1 β-甘露聚糖酶活性的測定
                2.8.3.2 β-甘露糖苷酶活性的測定
                2.8.3.3 α-半乳糖苷酶活性的測定
    3 結果與分析
        3.1 托魯巴姆種子的形態(tài)特征
        3.2 托魯巴姆種子生活力
        3.3 影響托魯巴姆種子萌發(fā)的因素
            3.3.1 溫度對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
            3.3.2 光照周期對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
            3.3.3 植物激素對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
            3.3.4 不同化學試劑處理對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
            3.3.5 層積和后熟對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響
        3.4 β-甘露聚糖酶、β-甘露糖苷酶和α-半乳糖苷酶活性的研究
            3.4.1 β-甘露聚糖酶活性的研究
                3.4.1.1 酶水解圈圖片分析
                3.4.1.2 β-甘露聚糖酶活性計算分析
            3.4.2 β-甘露糖苷酶活性的研究
                3.4.2.1 制作標準曲線
                3.4.2.2 β-甘露糖苷酶活性的測定結果
            3.4.3 α-半乳糖苷酶活性的研究
    4 結論與討論
結論
參考文獻
致謝
作者簡介


【參考文獻】：
期刊論文
[1]四唑染色法測定茄子種子生活力適宜條件的研究[J]. 余振宙,陶鴻,占夢丹,孟淑春.  種子. 2015(12)
[2]不同理化處理對托魯巴姆種子萌發(fā)的影響[J]. 蔡鵬,蔣馨,李躍建,劉獨臣,劉小俊,梁根云,楊宏,房超.  西南農(nóng)業(yè)學報. 2015(02)
[3]雙氧水對茄子種子萌發(fā)的影響[J]. 劉葉瓊,繆其松.  中國瓜菜. 2014(01)
[4]湖南省茄子產(chǎn)業(yè)發(fā)展現(xiàn)狀與建議[J]. 楊建國,汪端華,皮向紅.  湖南農(nóng)業(yè)科學. 2013(15)
[5]幾種常用檢測玉米種子生活力的方法比較[J]. 王麗紅.  種子科技. 2012(01)
[6]不同化學試劑處理對茄子陳種子發(fā)芽力的影響[J]. 王中偉.  長江蔬菜. 2011(10)
[7]化學物質(zhì)對野生茄子托魯巴姆種子萌發(fā)的影響[J]. 劉鳳華,李蕾,云興福.  內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)科技. 2011(02)
[8]嫁接對茄子杭茄1號植株和果實性狀的影響[J]. 傅鴻妃,張雅.  浙江農(nóng)業(yè)科學. 2010(05)
[9]茄子抗病育種研究進展[J]. 魏小傘,曹必好,雷建軍,陳國菊,陳清華.  中國蔬菜. 2010(10)
[10]不同引發(fā)處理對野生茄子砧木托魯巴姆萌發(fā)的影響[J]. 潛宗偉,吳震,陳海麗,楊明惠,崔彥玲.  種子. 2009(06)

碩士論文
[1]邊坡生態(tài)防護的植生混凝土研究[D]. 宋文杰.長沙理工大學 2011
[2]砧用茄子托魯巴姆（Solanum torvum）種子促萌技術的研究[D]. 潛宗偉.南京農(nóng)業(yè)大學 2009
[3]提高嵩草屬種子發(fā)芽率及其機理研究[D]. 張國云.西北農(nóng)林科技大學 2008
[4]山芹菜種子休眠特性及萌發(fā)生理的研究[D]. 陳姍姍.吉林農(nóng)業(yè)大學 2007
[5]青錢柳種子解除休眠及萌發(fā)生理的研究[D]. 王家源.南京林業(yè)大學 2005
[6]大山櫻種子休眠機理及催芽技術的研究[D]. 王艷華.北京林業(yè)大學 2005



本文編號：3732467