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水稻葉片衰老相關蛋白磷酸酶編碼基因OsSAPP2、OsSAPP3功能分析

發(fā)布時間:2020-06-07 18:55
【摘要】:衰老是植物界普遍存在的一種自然現(xiàn)象,在植物整個生命周期中扮演著至關重要的角色,具有重要的生物學意義。植物在適應外界環(huán)境的過程中,蛋白磷酸酶調控多個蛋白激酶的可逆磷酸化過程來使植物適應外界環(huán)境。2C型蛋白磷酸酶(PP2C)是一類廣泛存在于植物中的蛋白磷酸酶,通過脫磷酸化調控細胞的生長發(fā)育以及信號傳遞,從而調整體內相關基因的變化來對抗逆境脅迫。在前期研究中篩選出兩個PP2C型蛋白磷酸酶編碼的水稻基因OsSAPP2、OsSAPP3,獲得相應的過表達轉基因水稻,并獲得相應的突變體。在本研究主要對水稻OsSAPP2和OsSAPP3功能進行分析。1.蛋白定位本試驗構建了目標蛋白與EGFP的融合蛋白瞬時表達載體。通過對水稻原生質體進行亞細胞定位分析,結果顯示OsSAPP2-GFP和OsSAPP3-GFP融合蛋白均定位于細胞膜上。2.OsSAPP2基因功能運用GUS組織化學染色法對Pro_(OsSAPP2)-GUS轉基因植物中OsSAPP2啟動子活性進行時空表達模式分析。研究結果得出,OsSAPP2基因在轉基因水稻不同發(fā)育時期的葉、根、穗、莖等植物組織部位中均有活性。本試驗對OsSAPP2啟動子序列進行順式作用元件分析發(fā)現(xiàn)其含有激素響應元件,推測其可能響應多種植物激素。試驗結果也得出Pro_(OsSAPP2)-GUS轉基因水稻可以對外源激素處理發(fā)生響應,外源施加同樣濃度的ABA、ACC、SA和SL等激素可以顯著促進Pro_(OsSAPP2)-GUS的表達,而施加相同濃度的6-BA、IAA和GA_3等激素則顯著抑制Pro_(OsSAPP2)-GUS的表達;而施加相同濃度的JA和BR的影響不明顯。本研究結果發(fā)現(xiàn)35S-OsSAPP2轉基因水稻表現(xiàn)出葉面積和有效分蘗減小、抽穗提前以及光合指標和葉綠素含量降低,葉綠體結構發(fā)生異常,葉片比對照提前黃化早衰,葉綠素含量檢測結果與表型相對應等早衰表型。還發(fā)現(xiàn)35S-OsSAPP2轉基因水稻的穗重顯著增加,但穗長顯著減少,一次枝梗和二次枝梗中枝梗數(shù)、實粒數(shù)以及實粒重增加、但同時秕粒也增加,結實率下降,種子的粒寬和粒長增加,千粒重增加。對35S-OsSAPP2轉基因水稻進行稻米品質的測定得到的結果35S-OsSAPP2轉基因水稻在食味值和直鏈淀粉含量上要低于對照。結合前期實驗過程中觀察到的早衰表型變化,利用熒光定量RT-PCR檢測轉基因植物的分子機制變化發(fā)現(xiàn),隨著水稻葉片的衰老35S-OsSAPP2轉基因水稻中衰老相關因子NAP基因和葉綠素降解相關基因PAO、NYC的表達量上調,且隨著衰老的加劇表達量是升高的,光合作用相關基因PSaA、PSbA從抽穗期開始表達量下降。葉綠素合成相關基因CAO在蠟熟期時表達量降低。3.OsSAPP3基因功能經過外源誘導后的GVG-OsSAPP3轉基因水稻同樣表現(xiàn)早衰表型:光合指標降低,葉綠素含量降低、葉片比對照提前黃化早衰,葉綠體結構發(fā)生異常,葉綠素含量檢測結果與表型相對應。結合前期實驗過程中觀察到的早衰表型變化,利用熒光定量RT-PCR檢測轉基因植物的分子機制變化發(fā)現(xiàn),在經過12h的DEX誘導的GVG-OsSAPP3轉基因水稻,衰老相關因子NAP基因和葉綠素降解相關基因PAO、NYC的表達量上調,且隨著衰老的加劇表達量是上升的,光合作用相關基因PSaA、PSbA和葉綠素合成相關基因CAO表達量下調,且隨著衰老的加劇表達量是下降的。4.突變體鑒定、表型分析將所獲得OsSAPP2基因的突變體水稻種子進行基因型鑒定。結果發(fā)現(xiàn),OsSAPP2基因的突變體水稻單株均為T-DNA雜合插入。田間表型觀察發(fā)現(xiàn),在分蘗期開始,OsSAPP2基因的突變體水稻的分蘗少,在完熟期OsSAPP2基因的突變體水稻大部分葉片還是綠色未衰老的狀態(tài)。綜合以上本文研究結果,我們認為過表達OsSAPP2和OsSAPP3基因可以導致轉基因水稻葉片發(fā)生一系列的早衰表型,參與植物葉片衰老的調控,是正向調節(jié)因子。
【圖文】:

疊加圖,熒光,亞細胞定位,通道


圖 1 OsSAPP2 蛋白的亞細胞定位A:左到右分別為熒光通道、明場、疊加圖;B:左到右分別為 35S-OsSAPP2-GFP 蛋白熒光通道、明場、疊加圖。(Bar=10μm)Fig1 Subcellular localization of OsSAPP2 proteinA: Left to right are GFP、Bright、Merged;B: Left to right are 35S-OsSAPP2-GFP protein GFP、Bright、Merged. (Bar=10μm)2.3.2 35S-OsSAPP2 轉基因植株純合篩選選取已經在前期實驗中經過目的基因表達水平檢測的 35S-OsSAPP2 轉基因水稻,確定其為超表達株系:line1、line8、line48、line58 的 T2代種子和 SN9816 種子各 50 粒經過催芽后播種于苗床中。在苗床上培養(yǎng)三周左右,分別隨機選取 30 棵 35S-OsSAPP2 轉基因水稻苗提取其總 DNA,進行 PCR 擴增檢測,以 SN9816 的 DNA 和水為陰性對照。部分結果顯示(圖 2):line1、line8、line48、line58 所進行檢測的 30 株苗在 500bp時均有目的片段,確定其均為陽性植株。并經過兩年的的篩選與檢測,確定 line1、line8、line48、line58 四個株系為純合株系,選取 20 株苗每四株插于一個盆栽桶中,并對其進行后續(xù)的實驗指標的測定。

轉基因植株,苗床,轉基因水稻,疊加圖


圖 1 OsSAPP2 蛋白的亞細胞定位A:左到右分別為熒光通道、明場、疊加圖;B:左到右分別為 35S-OsSAPP2-GFP 蛋白熒光通道、明場、疊加圖。(Bar=10μm)Fig1 Subcellular localization of OsSAPP2 proteinA: Left to right are GFP、Bright、Merged;B: Left to right are 35S-OsSAPP2-GFP protein GFP、Bright、Merged. (Bar=10μm)2.3.2 35S-OsSAPP2 轉基因植株純合篩選選取已經在前期實驗中經過目的基因表達水平檢測的 35S-OsSAPP2 轉基因水稻,確定其為超表達株系:line1、line8、line48、line58 的 T2代種子和 SN9816 種子各 50 粒經過催芽后播種于苗床中。在苗床上培養(yǎng)三周左右,分別隨機選取 30 棵 35S-OsSAPP2 轉基因水稻苗提取其總 DNA,進行 PCR 擴增檢測,以 SN9816 的 DNA 和水為陰性對照。部分結果顯示(圖 2):line1、line8、line48、line58 所進行檢測的 30 株苗在 500bp時均有目的片段,確定其均為陽性植株。并經過兩年的的篩選與檢測,確定 line1、line8、line48、line58 四個株系為純合株系,選取 20 株苗每四株插于一個盆栽桶中,,并對其進行后續(xù)的實驗指標的測定。
【學位授予單位】:沈陽農業(yè)大學
【學位級別】:碩士
【學位授予年份】:2019
【分類號】:S511

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